Оптимизация среды культивирования диатомовой водоросли Anomoeoneis elliptica Zakrz. для накопления экономически важных метаболитов.Anomoeoneis elliptica Zakrz. диатомды балдырының культивирлеу ортасын экономикалық маңызды метаболиттерді жинақтау үшін опти
Ключевые слова:
диатомеи, рост, пигменты, белок, липиды. диатомея, өсу, пигменттер, липидтер.Аннотация
Диатомовые микроводоросли являются перспективным объектом биотехнологии, т.к. липиды богаты ценными полиненасыщенными жирными кислотами. Определены питательные среды, обеспечивающие высокую интенсивность процессов роста, фотосинтеза и накопления экономически важных метаболитов A.elliptica. Установлено, что при росте на среде Chu10 в клетках диатомеи накапливается около 70% липидов. При росте на этой среде в клетках диатомеи накапливается белка 19,2%. Диатомды микробалдырлар липидтерінің құнды полиқанықпаған май қышқылдарына бай болып келуіне байланысты биотехнологияның перспективті зерттеу объектілерінің бірі болып табылады. A.elliptica микробалдырының өсу процесі мен фотосинтез қарқындылығын жəне экономикалық маңызды метаболиттерді жинақтауын қамтамасыз ететін қоректік орта түрлері анықталды. Chu-10 қоректік ортасында өскен диотомея клеткаларында шамамен 70%-ға жуық липидтер жинақталатындығы белгілі болды. Осы аталған қоректік ортада өсірілген диатомея клеткасында 19,2% белок жинақталатындығы анықталды.Библиографические ссылки
1 Putz O., Gross W. Valuable products from biotechnology of microalgae//Appl.Microbio.Biotechnol. - 2004. -Vol.65. - P. 635-648.
2 De Pauw N., Persone G. Microalgae in aquaculture. In: Microalgal biotechnology. - Cambridge: Univ.Press. -1988. - Р. 197-221.
3. Adarme-Vega T.C., Lim D.K.Y., Timmins M., Vernen F. et al. Microalgal biofactories: a promising approach
towards sustainable omega-3 fatty acid production // Microbial Cell Factories. – 2012. - № 11. - Р. 96-106.
4 Lee S.G., Karawita R., Affan A., et al. Potential of benthic diatoms Achnanthes longiceps, Amphora coffeaeformis
and Navicula sp. (Bacillariophyceae) as antioxidant sources // Algae. - 2009. - Vol. 24, № 1. - Р. 44-55.
5 Andrianasolo E.H., Haramaty L., Vardi A., Whiteet E. al. Apoptosis-inducing galactolipids from a cultured marine
diatom Phaeodactylum tricornutum // J. Nat. Prod. - 2008. - Vol. 25. - №5. - Р. 885–890.
6 Lebeau T., Robert J.M., Diatom cultivation and biotechnologically relevant products. Part II: Сurrent and putative
products // Appl. Microbiol. Biotechnol. -2003. - Vol. 60, №6. - P. 624-632.
7 Tantanasarit C., Englande A.J., Babel S. Nitrogen, phosphorus and silicon uptake kinetics by marine diatom
Chaetoceros calcitrans under high nutrient concentrations // J. Exp. Marine Biol. аnd Ecol. - 2013. - Vol. 446. - P. 67-
75.
8 Anantharaj K., Govindasamy C., Natanamurugaraj G., Jeyachandran S. Effect of heavy metals on marine diatom
Amphora coffeaeformis (Agardh. Kutz) // Global journal of environmental research. - 2011. - Vol. 5. - № 3. - P. 112-117.
9 Jamali A.A., Akbari F., Ghorakhlu M. M., de la Guardia M., et.al. Applications of diatoms as potential microalgae
in nanobiotechnology // BioImpacts. - 2012. - Vol. 2. - P. 83-89
10 Supriya G., Ramachandra T.V. Chronicle of marine diatom culturing techniques // Ind. journ. of Fund. and
Applied Life sciences. - 2011. - Vol. 1, № 3. – Р. 282-294
11 Mohan N., Rajaram M.G., Baskara Boopathy A., Rengasamy R. Biomass and lipid production of marine diatom
Amphiprora paludosa W.Smith. at different nutrient concentrations // J. Algal Biomass Utilization. - 2012. - Vol. 3,№4. - P. 52-59.
12 Забелина М.М., Киселев И.А., Прошкина-Лавренко А.И, Шешукова В.С. Диатомовые водоросли. - М.:Советская наука. - 1951. - 618 с.
13 Guillard R.R.L., Lorenzen C.J. Yellow green algae with chlorophyllide c // J. Phycol. - 1972. - Vol. 1, №4. -Р.10-14.
14 Cohn S.A., Pickett-Heaps J.D. The effects of colchicine and dinitrophenol on the in vivo rates of anaphase A
and B in the diatom Surirella // Eur. J. Cell. Biol. – 1988. - Р. 523-530.
15 Сиренко Л.А., Сакевич А.И., Осипов Л.Ф. Методы физиолого-биохимического исследования
водорослей в гидробиологической практике. - Киев: «Наукова думка», 1975. - 245 с.
16 Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2
in higher plants, algae and natural phytyplankton // Biochem. Pflanz. - 1975. - № 167. - P. 191-194.
17 Кейтс М. Техника липидологии. - М.: Мир, 1975. - 234 с.
2 De Pauw N., Persone G. Microalgae in aquaculture. In: Microalgal biotechnology. - Cambridge: Univ.Press. -1988. - Р. 197-221.
3. Adarme-Vega T.C., Lim D.K.Y., Timmins M., Vernen F. et al. Microalgal biofactories: a promising approach
towards sustainable omega-3 fatty acid production // Microbial Cell Factories. – 2012. - № 11. - Р. 96-106.
4 Lee S.G., Karawita R., Affan A., et al. Potential of benthic diatoms Achnanthes longiceps, Amphora coffeaeformis
and Navicula sp. (Bacillariophyceae) as antioxidant sources // Algae. - 2009. - Vol. 24, № 1. - Р. 44-55.
5 Andrianasolo E.H., Haramaty L., Vardi A., Whiteet E. al. Apoptosis-inducing galactolipids from a cultured marine
diatom Phaeodactylum tricornutum // J. Nat. Prod. - 2008. - Vol. 25. - №5. - Р. 885–890.
6 Lebeau T., Robert J.M., Diatom cultivation and biotechnologically relevant products. Part II: Сurrent and putative
products // Appl. Microbiol. Biotechnol. -2003. - Vol. 60, №6. - P. 624-632.
7 Tantanasarit C., Englande A.J., Babel S. Nitrogen, phosphorus and silicon uptake kinetics by marine diatom
Chaetoceros calcitrans under high nutrient concentrations // J. Exp. Marine Biol. аnd Ecol. - 2013. - Vol. 446. - P. 67-
75.
8 Anantharaj K., Govindasamy C., Natanamurugaraj G., Jeyachandran S. Effect of heavy metals on marine diatom
Amphora coffeaeformis (Agardh. Kutz) // Global journal of environmental research. - 2011. - Vol. 5. - № 3. - P. 112-117.
9 Jamali A.A., Akbari F., Ghorakhlu M. M., de la Guardia M., et.al. Applications of diatoms as potential microalgae
in nanobiotechnology // BioImpacts. - 2012. - Vol. 2. - P. 83-89
10 Supriya G., Ramachandra T.V. Chronicle of marine diatom culturing techniques // Ind. journ. of Fund. and
Applied Life sciences. - 2011. - Vol. 1, № 3. – Р. 282-294
11 Mohan N., Rajaram M.G., Baskara Boopathy A., Rengasamy R. Biomass and lipid production of marine diatom
Amphiprora paludosa W.Smith. at different nutrient concentrations // J. Algal Biomass Utilization. - 2012. - Vol. 3,№4. - P. 52-59.
12 Забелина М.М., Киселев И.А., Прошкина-Лавренко А.И, Шешукова В.С. Диатомовые водоросли. - М.:Советская наука. - 1951. - 618 с.
13 Guillard R.R.L., Lorenzen C.J. Yellow green algae with chlorophyllide c // J. Phycol. - 1972. - Vol. 1, №4. -Р.10-14.
14 Cohn S.A., Pickett-Heaps J.D. The effects of colchicine and dinitrophenol on the in vivo rates of anaphase A
and B in the diatom Surirella // Eur. J. Cell. Biol. – 1988. - Р. 523-530.
15 Сиренко Л.А., Сакевич А.И., Осипов Л.Ф. Методы физиолого-биохимического исследования
водорослей в гидробиологической практике. - Киев: «Наукова думка», 1975. - 245 с.
16 Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2
in higher plants, algae and natural phytyplankton // Biochem. Pflanz. - 1975. - № 167. - P. 191-194.
17 Кейтс М. Техника липидологии. - М.: Мир, 1975. - 234 с.
Загрузки
Выпуск
Раздел
БИОТЕХНОЛОГИЯ: ОТ ИССЛЕДОВАНИЙ К ИННОВАЦИЯМ
