ИММУНОКОМПЕТЕНТТІ ЖАСУШАЛАРДЫҢ ТӨЗІМДІ, РЕВЕРТАНТТЫ ЖӘНЕ СЕЗІМТАЛ ІШЕК ТАЯҚШАЛАРЫНЫҢ ИНДУКЦИЯСЫНА ДИФФЕРЕНЦИАЛДЫ ЦИТОКИНДІК РЕАКЦИЯСЫ
DOI:
https://doi.org/10.26577/eb.2022.v92.i3.06Кілттік сөздер:
цитокиндер, төзімді, ревертант, сезімталАннотация
E. coli субкультураларының төзімділік фенотипінің эволюциялық консервативті, бөгде антигендердің (PAMP) функционалдығына әсерін және адамның перифериялық қанының иммунокомпетентті жасушаларына микробтардың (vitaPAMP) өміршеңдігін білдіретін патогенге байланысты молекулалық заңдылықтардың ерекше класын зерттеуге арналған жұмыс. Иммуноферменттік талдау арқылы E. coli төзімді, ревертантты және сезімтал субкультураларының тірі және бекітілген жасушаларын индукциялауға мононуклеарлық (PBMC), моноциттік (MON) және лимфоциттік (LYM) цитокиндік реакцияға жауаптардың салыстырмалы талдауы жүргізілді. Зерттелген E. coli субкультураларының бекітілген жасушаларының PAMP құрылымы негізінен адамның PBMC танитыны белгілі болды. Тірі E. coli жасушаларының патоген-байланысты молекулалық заңдылықтарын әртүрлі мақсатты жасушалар таниды, сондықтан төзімді субкультураның vitaPAMP құрылымдары негізінен PBMC – мен, ревертантты E. coli-MON адамның vitaPAMP құрылымына, сезімтал штаммның және PBMC-нің vitaPAMP құрылымына және MON-ға бірдей қарқындылықпен жауап береді. Жалпы, цитокиндерді иммунокомпетентті жасушалармен оркестрлеу модельдері E. coli резистенттілігі / сезімталдығы фенотипімен шартталған.
Библиографиялық сілтемелер
Drlica K. The mutant selection window and antimicrobial resistance // Antimicrobial Chemotherapy. – 2003. – Vol. 52. – P. 11-17.
Pamer E.G. Immune responses to commensal and environmental microbes // Nat. Immunol. – 2007. – Vol. 8. – P. 1173-1178.
Happel K.I., Bagby G.J., Nelson S. Host defense and bacterial pneumonia // Semin. Respir. Crit. Care Med. – 2004. – Vol. 25, No 1. – P. 43-52.
Mueller M., de la Pena A., Derendorf H. Issues in pharmacokinetics and pharmacodynamics of
anti-infective agents: kill curves versus MIC // Antimicrob. Agents Chemother. – 2004. – Vol. 48,
No 2. – P. 369-377.
DeRyke C.A., Lee S.Y., Kuti J.L., Nicolau D.P. Optimising dosing strategies of antibacterials utilising pharmacodynamic principles: impact on the development of resistance // Drugs. – 2006. – Vol. 66,
No 1. – P. 1-14.
Ambrose P.G., Bhavnani S.M., Rubino C.M., Louie A., Gumbo T., Forrest A. et al. Pharmacokinetics-pharmacodynamics of antimicrobial therapy: it's not just for mice anymore // Clin. Infect. Dis. – 2007. – Vol. 44, No 1. – P. 79-86.
Zhao X., Drlica K. A unified anti-mutant dosing strategy // Antimicrob. Chemother. – 2008. – Vol. 62, No 3. – P. 434-436.
Jumbe N., Louie A., Leary R., Liu W., Deziel M.R., Tam V.H. et al. Application of a mathematical model to prevent in vivo amplification of antibiotic-resistant bacterial populations during therapy // Clin. Invest. – 2003. – Vol. 112, No 2. – P. 275-285.
Drlica K., Zhao X.L. Is ‘dosing-to-cure’ appropriate in the face of antimicrobial resistance? // Rev. Med. Microbiol. – 2004. – Vol. 15, No 2. – P. 73-80.
Tumbarello M. et al. Predictors of mortality in patients with bloodstream infections caused by
extended-spectrum-beta-lactamase-producing Enterobacteriaceae: importance of inadequate initial antimicrobial treatment // Antimicrob. Agents Chemother. – 2007. – Vol. 51, No 6. – P. 1987-1994.
Kumarasamy K.K. et al. Emergence of a new antibiotic resistance mechanism in India, Pakistan, and the UK: a molecular, biological, and epidemiological study // Lancet Infect. Dis. – 2010. – Vol. 10, No 9. – P. 597-602.
Fleming A. Penicillin. Nobel Lectures. https://www.nobelprize.org/?p=12848&pagespeed=noscript?pagespeed=noscript. 11.08.2021.
World Health Organization 2012. The evolving threat of antimicrobial resistance: options for action. http://whqlibdoc.who.int/publications/2012/9789241503181_eng.pdf. 11.08.2021.
Cotroneo N., Rubio A., Critchley I.A., Pillar C., Pucci M.J. In vitro and in vivo characterization of tebipenem, an oral carbapenem // Antimicrob. Agents Chemother. – 2020. – Vol. 64, No 8.
Zhang D., Chen J., Jing Q., Chen Z., Ullah A., Jiang L., Zheng K., Yuan C. and Huang M. Development of a Potent Antimicrobial Peptide With Photodynamic Activity // Front. Microbiol. – 2021. – Vol. 12.
Volodina G.V., Davtyan T.K., Kulmanov M.E., Dzhumagazieva A.B., Tursunova S.K., Abekova A.O. et al. The effect of antibiotic-resistant and sensitive Escherichia coli on the production of pro-inflammatory cytokine response by human peripheral blood mononuclear cells // J. Clin. Cell Immunol. – 2017. –
Vol. 8, No 522.
Korotetskiy I.S., Joubert M., Taukobong S. et al. Complete Genome Sequence of a Multidrug-Resistant Strain, Escherichia coli ATCC BAA-196, as a Model for Studying Induced Antibiotic Resistance Reversion // Microbiol. Resour. Announc. – 2020. – Vol. 9, No 50.
Mourao-Sa D., Roy S., Blander J.M. Vita-PAMPs: signatures of microbial viability // Adv. Exp. Med. Biol. – 2013. – Vol. 785. – P. 1-8.
Schnare M., Barton G.M., Holt A.C., Takeda K., Akira S., Medzhitov R. Toll-like receptors control activation of adaptive immune responses // Nat. Immunol. – 2001. – Vol. 2. – P. 947-950.
Kawai T., Akira S. Toll-like receptors and their crosstalk with other innate receptors in infection and immunity // Immunity. – 2011. – Vol. 34. – P. 637-650.
Akira S., Hemmi H. Recognition of pathogen-associated molecular patterns by TLR family // Immunol. Lett. – 2003. – Vol. 85. – P. 85-95.
Granucci F., Feau S., Zanoni I., Pavelka N., Vizzardelli C., Raimondi G. et al. The immune response is initiated by dendritic cells via interaction with microorganisms and interleukin-2 production // J. Infect. Dis. – 2003. – Vol. 187. – P. 346-350.
Sharpe A.H. Mechanisms of costimulation // Immunol. Rev. – 2009. – Vol. 229. – P. 5-11.
Medzhitov R. Recognition of microorganisms and activation of the immune response // Nature. –
– Vol. 449. – P. 819-826.
Blander J.M., Sander L.E. Beyond pattern recognition: five immune checkpoints for scaling the microbial threat // Nature Rev. Immunology. – 2012. – Vol. 12. – P. 215-225.
Akira S., Uematsu S., Takeuchi O. Pathogen recognition and innate immunity // Cell. – 2006. –
Vol. 124. – P. 783-801.
Koenig C.H., Finger H., Hof H. Failure of killed Listeria monocytogenes vaccine to produce protective immunity // Nature. – 1982. – Vol. 297. – P. 233-234.
Detmer A., Glenting J. Live bacterial vaccines – a review and identification of potential hazards // Microbology Cell Fact 5. – 2006. – Vol. 5. – P. 23.
Sander L.E., Michael J., Mark V. Sensing prokaryotic mRNA signifies microbial viabilty and promotes immunity // Nature. – 2012. – Vol. 474. – P. 385-389.
Ahmed S.T., Ivashkiv L.B. Inhibition of IL-6 and IL-10 signaling and stat activation by inflammatory and stress pathways // Immunol. – 2000. – Vol. 165, No 9. – P. 5227-5237.
