Микроклональное размножение коммерческих сортов роз in vitro
DOI:
https://doi.org/10.26577/EB-2017-4-1300Кілттік сөздер:
роза (Rosa L.), микроклональное размножение, in vitro, регуляторы ростаАннотация
С целью размножения посадочного материала гибридныхи коммерческих сортов роз казахстанской селекции, адаптированных к аридным регионам Западного Казахстана была использована технология микроклонального размножения in vitro. Для введения гибридных и сортовых роз в культуру in vitro узловые сегменты с пазушными почками, а также сегменты междоузлий, взятые с растений, активно вегетирующих в Мангышлакском экспериментальном ботаническом саду изолировали в асептических условиях. Стерилизация путем обработки эксплантов 10% раствором перекиси водорода в течение 8 минут оказалась наиболее эффективной, по сравнению с обработкой эксплантов в 70% этаноле (20 сек.) и последующей 5-минутной экспозицией в 5% гипохлориде натрия. При использовании такого способа дезинфекции выход жизнеспособных эксплантов был максимальным и составлял 68,4%.Клонирование роз осуществлялось на различных вариантах модифицированной по фитогормонам питательной среде Мурасиге-Скуга. Наибольшее количество микроклонов образовывалось на среде МС, содержащей 3 мг/л БАП и 0,5 мг/л 2,4-Д. В качестве антиоксиданта в состав среды МС было добавлено 0,5 мг/л аскорбиновой кислоты. Для укоренения микрочеренков применялась среда МС с 2 мг/л ИУК. Коэффициент размножения при таких условиях равнялся 4. Данный оптимизированный протокол рекомендуется для интродукции декоративных гибридных и коммерческих сортов роз, для дальнейшего озеленения прикаспийского региона.
Библиографиялық сілтемелер
2. Candi F.A., Kazaz О. Biotechnology of roses: progress and future peospects // Suleyman Dermirel Univer. Orman Fakultesi Dergisi (Seri:A). -2009. - Vol.1. -P.167-183.
3. Das P. Mass cloning of Rose and Mussaenda, popular garden plants, via somatic embryogenesis // Hort.Sci. -2010. – Vol. 37. –P. 70-78.
4. Зонтиков Д.Н., Зонтикова С.А. Особенности клонального микроразмножения декоративных сортов Rosa hybrid // Вестник КГУ им.Н.А.Некрасова – 2011. – № 5. –P. 56-63
5. Khosravi P., Kermani M.J., Nematzadeh G.A., Bihamta M.R. A protocol for mass production of Rosa hybridacv. Iceberg through in vitro propagation // Iranian J. of Biotechnology. – 2007. - Vol. 5. –P. 100-104.
6. Kim S.W., Oh M.J., Liu J.R. Somatic embryogenesis and plant regeneration in zygotic embryo explant cultures of rugosa rose // Plant Biotechnology Reports. -2009. - Vol. 3. - P. 199-203.
7. Krosh-Khui M., De Silva J.A.T. In vitro culture of the Rosa species // Floriculture, Ornamental and Plant Biotechnology- 2006. - Vol. 2. – P.514-527.
8. Malabadi R.B., Van Staden J. Role of antioxidants and amino acids on somatic embryogenesis of Pinus patula. // In Vitro Cellular and Developmental Biology: Plant. – 2005. - Vol. 41. – P. 181–186.
9. Murashige T, Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. // Physiologia Plantarum. – 1962. – Vol. 15. – P. 473-497.
10. Мухамбетжанов С.К., Мурсалиева В.К., Вечерко Н.А., Нам С.В. Оптимизация протоколов питательных сред для микроклонального размножения роз // Вестник КазНУ. Серия биологическая. – 2011. -№ 4. – C. 45-48.
11. Мухамбетжанов С.К., Нам С.В., Вечерко Н.А., Мурсалиева В.К. Факторы влияющие на рост и развитие роз in vitro // Биотехнология. Теория и практика. – 2010. - № 1. – C. 41-52.
12. Nak-Udom N., Kanchanapoom K., Kanchanapoom K. Micropropagation from cultured nodal explants of rose (Rosa hybrida L. cv. ‘Perfume Delight’) // Songklanakarin J. Sci. Technol. – 2009. – Vol. 31. –P. 583-586.
13. Nitish Kumar, Reddy M. In vitro Plant Propagation: a review // Journal of Forest Science. – 2011. - Vol. 27. – P. 61-72.
14. Pratar Kumar Pati, Siba Prasad Rath, Madhu Sharma, Anil Sood, Paramvir Singh Ahuja. In vitro propagation of rose - a review // Biotechnology Advances. – 2006. – Vol. 24. – P. 94-114.
15. Roy P.K., Mamum A.N.K., Ahmed G. In vitro plantlets regeneration of rose // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. – 2004. - Vol.14. - P.149-154.
16. Ruzic D., Lazic T. Micropropagation as means of rapid multiplication of newly developed blackberry and black currant cultivars // Agriculturae Conspectus Scientificus. – 2006. – Vol. 71. – P. 149-153.
17. Сапаргали О., Нам С.В., Вечерко Н.А., Мухамбетжанов С.К., Мурсалиева В.К. Влияние генотипа на микроклональное размножение роз // Сб. тр. междунар.конф. «Актуальные проблемы ботанического ресурсоведения», Алматы. - 2010. - С.341-343
18. Saxena G., Banerjee S., Rahman L., Mallavarapu G.R., Sharma S., Kumar S. An efficient in vitro procedure for micropropagation and generatio of somaclones of rose scented Pelargonium // Plant Science. – 2000. – Vol. 29. –P. 133-140.
19. Smith R.H. Plant Tissue Culture: Techniques and Experiments. Academic Press. – 2000. - P. 31-46.
20. Stasolla C., Lam M.S.W., Yeung E.C. Exogenous applications of ascorbic acid enhance shoot apical meristem growth and induce shoot organogenesis in germinating white spruce Picea glauca somatic embryos // International Journal of Plant Sciences. – 2006. - № 167. – P. 429–436.
References
1. Besschetnova M.V., Mikhneva T.N. (1979) Rosi [Roses]. - Alma-Ata: Kainar, 120 p.
2. Candi F.A., Kazaz О. (2009) Biotechnology of roses: progress and future peospects. Suleyman Dermirel Univer. Orman Fakultesi Dergisi (Seri:A, vol.1, pp. 167-183.
3. Das P (2010) Mass cloning of Rose and Mussaenda, popular garden plants, via somatic embryogenesis. Hort.Sci., vol. 37, pp. 70-78.
4. Zontikov D.H., Zontikova S.A. (2011) Osobennosti klonalnogo microrazmnozhenia dekorativnih sortov Rosa hybrid [Features of clonal micropropagation ornamental varities of Rosa hybrid]. Byulleten KGU imeni N.A.Nekrasova, vol. 5, pp. 56-63.
5. Khosravi P., Kermani M.J., Nematzadeh G.A., Bihamta M.R. (2007) A protocol for mass production of Rosa hybridacv. Iceberg through in vitro propagation. Iranian J. of Biotechnology, vol. 5, pp.100-104.
6. Kim S.W., Oh M.J., Liu J.R. (2009) Somatic embryogenesis and plant regeneration in zygotic embryo explant cultures of rugosa rose. Plant Biotechnology Reports, vol. 3, pp. 199-203.
7. Krosh-Khui M., De Silva J.A.T. (2006) In vitro culture of the Rosa species. Floriculture, Ornamental and Plant Biotechnology, vol. 2, pp. 514-527.
8. Malabadi R.B., Van Staden J. (2005) Role of antioxidants and amino acids on somatic embryogenesis of Pinus patula. In Vitro Cellular and Developmental Biology: Plant, vol. 41, pp. 181–186.
9. Murashige T, Skoog F. (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, vol. 15, pp. 473-497.
10. Mukhambetzhanov S.K., Mursalieva V.K., Vecherko N.A., Nam S.V. (2011) Optimizacia protokolov pitatelnih sred dlja mikroklonalnogo razmnozhenia roz [Optimisation of protocol of nutrient medium for microclonal propagation of rose] Bulletin of Kazakh National University. Experimental Biology, vol. 4, pp. 45-48.
11. Mukhambetzhanov S.K., Nam S.V., Vecherko N.A., Mursalieva V.K. (2010) Faktori vlijajushie na rost i razvitie roz in vitro [The factors influence on growth and development of rose in vitro]. Biotechnology: theory and practice, vol. 1, pp. 41-52.
12. Nak-Udom N., Kanchanapoom K., Kanchanapoom K. (2009) Micropropagation from cultured nodal explants of rose (Rosa hybrida L. cv. ‘Perfume Delight’) Songklanakarin J. Sci. Technol., vol. 31, pp. 583-586.
13. Nitish Kumar, Reddy M. (2011) In vitro Plant Propagation: a review. Journal of Forest Science, vol. 27, pp. 61-72.
14. Pratar Kumar Pati, Siba Prasad Rath, Madhu Sharma, Anil Sood, Paramvir Singh Ahuja (2006) In vitro propagation of rose - a review. Biotechnology Advances, vol. 24, pp. 94-114.
15. Roy P.K., Mamum A.N.K., Ahmed G. (2004) In vitro plantlets regeneration of rose. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, vol. 14, pp. 149-154.
16. Ruzic D., Lazic T. (2006) Micropropagation as means of rapid multiplication of newly developed blackberry and black currant cultivars. Agriculturae Conspectus Scientificus, vol. 71, pp. 149-153.
17. Sapargali O., Nam S.V., Vecherko N.A., Mukhambetzhanov S.K., Mursalieva V.K. (2010) Influence of the genotype on the microclonal propagation of roses. Abstracts of international conference "Actual problems of botanical research", Almaty, pp. 341-343.
18. Saxena G., Banerjee S., Rahman L., Mallavarapu G.R., Sharma S., Kumar S. (2000) An efficient in vitro procedure for micropropagation and generatio of somaclones of rose scented Pelargonium. Plant Science, vol. 29, pp. 133-140.
19. Smith R.H. (2000) Plant Tissue Culture: Techniques and Experiments. Academic Press, pp. 31-46.
20. Stasolla C., Lam M.S.W., Yeung E.C. (2006) Exogenous applications of ascorbic acid enhance shoot apical meristem growth and induce shoot organogenesis in germinating white spruce Picea glauca somatic embryos. International Journal of Plant Sciences, vol. 167, pp. 429–436.