Physiological activity of extracellular protein fraction of wheat cell culture
31 25
Abstract
Antiauxin activity extracellular hydrophilic (HPL) and hydrophobic (HPB) protein fractions isolated from wheat cell suspension have been revealed. Especially HPB fraction has more antiauxin activity. revealed Cytokinine like effect of HPL protein fraction have been showed. Ability of extracellular HPB fraction to stimulate the germination of mustard seeds in stress conditions (0,5 % NaCl) have been revealed. Auxin like activity of extracellular HPL and HPB fractions haven’t revealed.
References
1 De Jong A.J., Hoeberiechts F.A., Yakimova E.T., Maximovova E., Woltering E.J. Chemical-induced apoptotic cell death in tomato cells involvement of caspase-like proteases //Planta. – 2000. – V. 211. – P. 656-662.
2 Marticke K.H., Reisener H.J., Fischer R., Hippe-Sanwald S. In situ detection of a fungal glycoprotein-elicitor in stem rust-infected susceptible and resistant wheat using immunogold electron microscopy //Eur. J. Cell Biol. – 1998. – V. 76, №4. – P. 265-273.
3 Menden B., Kohlhoff M., Moerschbacher B.M. Wheat cells accumulate a syringyl-rich lignin during the hypersensitive resistance response // Phytochemistry – 2006. – V. 21. – P. 75-80.
4 Ko Shimamoto, Utut Suharsono, wong Hann Ling, Masayuki Fujiwara, Ayako Nakashima, Kenichi Wakabayashi, Nguen Phuong Thao, Reinhard pinontoan, and Tsutomu Kawasaki. G-proteins in cell death and disease resistance of rice //Abstracts of the conference a plant apoptosis. – Colorado. – 2002. – P. 35.
5 Бишимбаева Н. К., Денебаева М. Г., Амирова А. К., Рахимова Е.В. Особенности гистологического строения рыхлых эмбриогенных каллусов ячменя // Известия АН РК, серия биологическая и медицинская. – 2001. – №1-2. – С.7-14.
6 Bishimbaeva N.K. A role for apoptosis and polysaccharides secretion in the long-term somatic embryogenesis of cereals //Bull. Of State Nikit. Bot. Gard. – 2002. – 86. – P. 47-52.
7 Бишимбаева Н.К., Рахимова Е.В., Амирова А.К., Рахимбаев И.Р. Электронно-микроскопическое изучение клеток эмбриогенных каллусов пшеницы // Известия НАН РК МОН РК. – 2007. – №1. – С. 41-48.
8 Бишимбаева Н.К. Электронно-микроскопическое изучение программированной гибели клеток в культуре ткани зерновых злаков // Доклады НАН РК, 2007. - №2. – С. 75-79.
9 Бишимбаева Н.К. Регуляция соматического эмбриогенеза и длительное поддержание тотипотентности в культуре тканей пшеницы и ячменя // Доклады НАН РК МОН РК. – 2007. – №4. – С. 71-76.
10 Бишимбаева Н.К. Цитофизиологические основы биотехнологии длительной регенерации растений в культуре тканей зерновых злаков /Автореф. дисс. на соиск. уч. ст. док. биол. наук., Алматы, 2007. – 38 с.
11 Murashige T., Scoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant., 1962. – V.15, №13. – P. 473-497.
12 Головацкая И.Ф., Карначук Р.А. Практикум по физиологии растений. Ростовые вещества. Учеб. пособие. – Томск, 1995. – 113 с.
13 Arjon J. van Hengel, Zewdie Tadesse, Peter Immerzeel, Henk Schols, Ab van Kammen, and Sacco C. de Vries. N-Acetylglucosamine and Clucosamine-Containing Arabinogalactan Proteins Control Somatic Embryogenesis //Plant Physiol., 2001. – V. 125. – P. 1880-1890.
14 Cammue B.E., De Bolle M.F., Schoots H.M., Terras F.R., Osborn R.W. Gene-encoded antimicrobial peptides from plants //Cuba Found Symp. 186. – I994. – P 91-101.
15 Matsubayashi Y., Sakagami, Y. Phutosulfokine, sulfated peptides that induce the proliferation of single mesophyll cells of Asparagus officinalis L. //Proc. Natl. Acad. Sci.USA, 1996. – V. 93. – P. 7623-7627.
16 Stirn S., Mordhorst A. P., Fuchs S., Lorz H. Molecular and biochemical markers for embryogenic potential and regenerative capacity of barley (Hordeum vulgare L.) cell cultures //Plant Science, 1995. – V. 106. - P. 195-206.
2 Marticke K.H., Reisener H.J., Fischer R., Hippe-Sanwald S. In situ detection of a fungal glycoprotein-elicitor in stem rust-infected susceptible and resistant wheat using immunogold electron microscopy //Eur. J. Cell Biol. – 1998. – V. 76, №4. – P. 265-273.
3 Menden B., Kohlhoff M., Moerschbacher B.M. Wheat cells accumulate a syringyl-rich lignin during the hypersensitive resistance response // Phytochemistry – 2006. – V. 21. – P. 75-80.
4 Ko Shimamoto, Utut Suharsono, wong Hann Ling, Masayuki Fujiwara, Ayako Nakashima, Kenichi Wakabayashi, Nguen Phuong Thao, Reinhard pinontoan, and Tsutomu Kawasaki. G-proteins in cell death and disease resistance of rice //Abstracts of the conference a plant apoptosis. – Colorado. – 2002. – P. 35.
5 Бишимбаева Н. К., Денебаева М. Г., Амирова А. К., Рахимова Е.В. Особенности гистологического строения рыхлых эмбриогенных каллусов ячменя // Известия АН РК, серия биологическая и медицинская. – 2001. – №1-2. – С.7-14.
6 Bishimbaeva N.K. A role for apoptosis and polysaccharides secretion in the long-term somatic embryogenesis of cereals //Bull. Of State Nikit. Bot. Gard. – 2002. – 86. – P. 47-52.
7 Бишимбаева Н.К., Рахимова Е.В., Амирова А.К., Рахимбаев И.Р. Электронно-микроскопическое изучение клеток эмбриогенных каллусов пшеницы // Известия НАН РК МОН РК. – 2007. – №1. – С. 41-48.
8 Бишимбаева Н.К. Электронно-микроскопическое изучение программированной гибели клеток в культуре ткани зерновых злаков // Доклады НАН РК, 2007. - №2. – С. 75-79.
9 Бишимбаева Н.К. Регуляция соматического эмбриогенеза и длительное поддержание тотипотентности в культуре тканей пшеницы и ячменя // Доклады НАН РК МОН РК. – 2007. – №4. – С. 71-76.
10 Бишимбаева Н.К. Цитофизиологические основы биотехнологии длительной регенерации растений в культуре тканей зерновых злаков /Автореф. дисс. на соиск. уч. ст. док. биол. наук., Алматы, 2007. – 38 с.
11 Murashige T., Scoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant., 1962. – V.15, №13. – P. 473-497.
12 Головацкая И.Ф., Карначук Р.А. Практикум по физиологии растений. Ростовые вещества. Учеб. пособие. – Томск, 1995. – 113 с.
13 Arjon J. van Hengel, Zewdie Tadesse, Peter Immerzeel, Henk Schols, Ab van Kammen, and Sacco C. de Vries. N-Acetylglucosamine and Clucosamine-Containing Arabinogalactan Proteins Control Somatic Embryogenesis //Plant Physiol., 2001. – V. 125. – P. 1880-1890.
14 Cammue B.E., De Bolle M.F., Schoots H.M., Terras F.R., Osborn R.W. Gene-encoded antimicrobial peptides from plants //Cuba Found Symp. 186. – I994. – P 91-101.
15 Matsubayashi Y., Sakagami, Y. Phutosulfokine, sulfated peptides that induce the proliferation of single mesophyll cells of Asparagus officinalis L. //Proc. Natl. Acad. Sci.USA, 1996. – V. 93. – P. 7623-7627.
16 Stirn S., Mordhorst A. P., Fuchs S., Lorz H. Molecular and biochemical markers for embryogenic potential and regenerative capacity of barley (Hordeum vulgare L.) cell cultures //Plant Science, 1995. – V. 106. - P. 195-206.
Downloads
How to Cite
Амирова, А. К., Сартбаева, И. Ә., & Бишімбаева, Н. К. (2019). Physiological activity of extracellular protein fraction of wheat cell culture. Experimental Biology, 45(3), 16–19. Retrieved from https://bb.kaznu.kz/index.php/biology/article/view/1354
Issue
Section
BIOTECHNOLOGY
