Оптимизация условий агробактериальной трансформации пыльцы хлопчатника казахстанской селекции
41 34
Аннотация
Оптимизирован способ получения трансгенных растений отечественного хлопчатника при помощи метода агробактериальной трансформации пыльцы. Получены трансгенные растения хлопчатника с. Мактаарал 4005 с встроенными репортерным GUS- геном и селективным маркерным nptII- геном.
Библиографические ссылки
1 Ozyigit I.I., Kahraman M.V., Ercan O. Relation between Explant Age, Total Phenols and Regeneration Response in Tissue Cultured Cotton (Gossypium hirsutum L.)// African Journal. Biotechnolnology., 2007. – V.6. – P.3-8.
2 Умбетаев И.И. Технология возделывания отечественных сортов хлопчатника – Алматы. – 2005. – 235 с
3 Umbeck p., Johnson G., Barton K., Swain W. Genetically transformed cotton (Gossypium hirsutum L.) plants // Biotechnology, 1987. – V. 5. – P. 263-265.
4 Umbeck P., Swain W., Yang N.S. Inheritance and eхpression of genes for kanamycin and chloramphenicol resistance in transgenic cotton plants // Crop Science, 1989. – V. 29. – P. 196-201.
5 Firoozabady E., De Boer D.L., Merlo D.J., Halk E.L., Amerson L.N., Rashka K.E., Murray E.F. Transformation of cotton (Gossypium hirsutum L.) by Agrobacterium tumefaciens and regeneration of transgenic plants // Plant Molecular Biology, 1987. – V. 10. – P. 105-116.
6 Cousins Y.L., Lyon B.R., Llewellyn D.J. Transformation of an Australian cotton cultivar: Prospects for cotton improvement through genetic engineering // Australian Journal Plant Physiology, 1991. – V. 18. – P. 481-494.
7 Mishra R., Wang H., Yadav N.R., Wilkins T. Development of a highly regenerable elite Acala cotton (Gossypium hirsutum cv. Maxxa) - a step towards genotype independent regeneration // Plant Cell Tissue Org. Cult., 2003. – V. 73. – P. 21-35.
8 Zapata C., Park S.H., El-Zik K.M., Smith R.H. Transformation of a Texas cotton cultivar by using Agrobacterium and the shoot apex // Theoretical and Applied Genetics, 1999. – V. 98. – P. 252-256.
9 Li X., Wang X.D., Zhao X., Dutt Y. Improvement of cotton fiber quality by transforming the acsA and acsB genes into Gossypium hirsutum L. by means of vacuum infiltration //Plant Cell Report, 2004. – V. 22. – P. 691-697.
10 Chaudhary B., Kumar S., Prasad K.V.S., Oinam G.S., Burma P.K., Pental.D. Slow desiccation leads to high- frequency shoot recovery from transformed somatic embryos of cotton (Gossypium hirsutum L cv.Coker 310 FR). // Plant Cell Rep., 2003. – V. 21. – P. 955-960.
11 Jefferson R.A. Assaying chimeric genes in plants: the GUS gene fusion system // Plant Mol. Biol. Rep., 1987. – V.5. – P. 387-405
12 Chaudhary B., Kumar S., Prasad K.V.S., Oinam G.S., Burma P.K., Pental.D. Slow desiccation leads to high- frequency shoot recovery from transformed somatic embryos of cotton (Gossypium hirsutum L cv.Coker 310 FR). // Plant Cell Rep., 2003. – V. 21. – P. 955-960.
13 Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. – Москва «Мир», 1984.
2 Умбетаев И.И. Технология возделывания отечественных сортов хлопчатника – Алматы. – 2005. – 235 с
3 Umbeck p., Johnson G., Barton K., Swain W. Genetically transformed cotton (Gossypium hirsutum L.) plants // Biotechnology, 1987. – V. 5. – P. 263-265.
4 Umbeck P., Swain W., Yang N.S. Inheritance and eхpression of genes for kanamycin and chloramphenicol resistance in transgenic cotton plants // Crop Science, 1989. – V. 29. – P. 196-201.
5 Firoozabady E., De Boer D.L., Merlo D.J., Halk E.L., Amerson L.N., Rashka K.E., Murray E.F. Transformation of cotton (Gossypium hirsutum L.) by Agrobacterium tumefaciens and regeneration of transgenic plants // Plant Molecular Biology, 1987. – V. 10. – P. 105-116.
6 Cousins Y.L., Lyon B.R., Llewellyn D.J. Transformation of an Australian cotton cultivar: Prospects for cotton improvement through genetic engineering // Australian Journal Plant Physiology, 1991. – V. 18. – P. 481-494.
7 Mishra R., Wang H., Yadav N.R., Wilkins T. Development of a highly regenerable elite Acala cotton (Gossypium hirsutum cv. Maxxa) - a step towards genotype independent regeneration // Plant Cell Tissue Org. Cult., 2003. – V. 73. – P. 21-35.
8 Zapata C., Park S.H., El-Zik K.M., Smith R.H. Transformation of a Texas cotton cultivar by using Agrobacterium and the shoot apex // Theoretical and Applied Genetics, 1999. – V. 98. – P. 252-256.
9 Li X., Wang X.D., Zhao X., Dutt Y. Improvement of cotton fiber quality by transforming the acsA and acsB genes into Gossypium hirsutum L. by means of vacuum infiltration //Plant Cell Report, 2004. – V. 22. – P. 691-697.
10 Chaudhary B., Kumar S., Prasad K.V.S., Oinam G.S., Burma P.K., Pental.D. Slow desiccation leads to high- frequency shoot recovery from transformed somatic embryos of cotton (Gossypium hirsutum L cv.Coker 310 FR). // Plant Cell Rep., 2003. – V. 21. – P. 955-960.
11 Jefferson R.A. Assaying chimeric genes in plants: the GUS gene fusion system // Plant Mol. Biol. Rep., 1987. – V.5. – P. 387-405
12 Chaudhary B., Kumar S., Prasad K.V.S., Oinam G.S., Burma P.K., Pental.D. Slow desiccation leads to high- frequency shoot recovery from transformed somatic embryos of cotton (Gossypium hirsutum L cv.Coker 310 FR). // Plant Cell Rep., 2003. – V. 21. – P. 955-960.
13 Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. – Москва «Мир», 1984.
Загрузки
Как цитировать
Бишимбаева, Н. К., Ертаева, Б. Е., Амирова, А. К., Шаяхметова, И. Ш., Гусейнов, И. Р., Умбетаев, И. И., & Рахимбаев, И. Р. (2010). Оптимизация условий агробактериальной трансформации пыльцы хлопчатника казахстанской селекции. Вестник КазНУ. Серия биологическая, 45(3), 35–37. извлечено от https://bb.kaznu.kz/index.php/biology/article/view/1371
Выпуск
Раздел
БИОТЕХНОЛОГИЯ
