Физиологическая активность экстрацеллюлярных белковых фракции клеточной культуры пшеницы
31 25
Аннотация
Выявлена антиауксиновая активность экстрацеллюлярных гидрофильных (ГФЛ) и гидрофобных (ГФБ) белковых фракций, выделенных из суспензии клеток пшеницы, особенно наибольшую антиауксиновую активность показала ГФБ фракция. Цитокининподобный эффект выявлен у ГФЛ фракции белков. Выявлена способность внеклеточных ГФБ белков повышать всхожесть семян горчицы в условиях стресса (0,5% NaCl). Ауксиноподобная активность экстрацеллюлярных ГФЛ и ГФБ фракций не обнаружено.
Библиографические ссылки
1 De Jong A.J., Hoeberiechts F.A., Yakimova E.T., Maximovova E., Woltering E.J. Chemical-induced apoptotic cell death in tomato cells involvement of caspase-like proteases //Planta. – 2000. – V. 211. – P. 656-662.
2 Marticke K.H., Reisener H.J., Fischer R., Hippe-Sanwald S. In situ detection of a fungal glycoprotein-elicitor in stem rust-infected susceptible and resistant wheat using immunogold electron microscopy //Eur. J. Cell Biol. – 1998. – V. 76, №4. – P. 265-273.
3 Menden B., Kohlhoff M., Moerschbacher B.M. Wheat cells accumulate a syringyl-rich lignin during the hypersensitive resistance response // Phytochemistry – 2006. – V. 21. – P. 75-80.
4 Ko Shimamoto, Utut Suharsono, wong Hann Ling, Masayuki Fujiwara, Ayako Nakashima, Kenichi Wakabayashi, Nguen Phuong Thao, Reinhard pinontoan, and Tsutomu Kawasaki. G-proteins in cell death and disease resistance of rice //Abstracts of the conference a plant apoptosis. – Colorado. – 2002. – P. 35.
5 Бишимбаева Н. К., Денебаева М. Г., Амирова А. К., Рахимова Е.В. Особенности гистологического строения рыхлых эмбриогенных каллусов ячменя // Известия АН РК, серия биологическая и медицинская. – 2001. – №1-2. – С.7-14.
6 Bishimbaeva N.K. A role for apoptosis and polysaccharides secretion in the long-term somatic embryogenesis of cereals //Bull. Of State Nikit. Bot. Gard. – 2002. – 86. – P. 47-52.
7 Бишимбаева Н.К., Рахимова Е.В., Амирова А.К., Рахимбаев И.Р. Электронно-микроскопическое изучение клеток эмбриогенных каллусов пшеницы // Известия НАН РК МОН РК. – 2007. – №1. – С. 41-48.
8 Бишимбаева Н.К. Электронно-микроскопическое изучение программированной гибели клеток в культуре ткани зерновых злаков // Доклады НАН РК, 2007. - №2. – С. 75-79.
9 Бишимбаева Н.К. Регуляция соматического эмбриогенеза и длительное поддержание тотипотентности в культуре тканей пшеницы и ячменя // Доклады НАН РК МОН РК. – 2007. – №4. – С. 71-76.
10 Бишимбаева Н.К. Цитофизиологические основы биотехнологии длительной регенерации растений в культуре тканей зерновых злаков /Автореф. дисс. на соиск. уч. ст. док. биол. наук., Алматы, 2007. – 38 с.
11 Murashige T., Scoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant., 1962. – V.15, №13. – P. 473-497.
12 Головацкая И.Ф., Карначук Р.А. Практикум по физиологии растений. Ростовые вещества. Учеб. пособие. – Томск, 1995. – 113 с.
13 Arjon J. van Hengel, Zewdie Tadesse, Peter Immerzeel, Henk Schols, Ab van Kammen, and Sacco C. de Vries. N-Acetylglucosamine and Clucosamine-Containing Arabinogalactan Proteins Control Somatic Embryogenesis //Plant Physiol., 2001. – V. 125. – P. 1880-1890.
14 Cammue B.E., De Bolle M.F., Schoots H.M., Terras F.R., Osborn R.W. Gene-encoded antimicrobial peptides from plants //Cuba Found Symp. 186. – I994. – P 91-101.
15 Matsubayashi Y., Sakagami, Y. Phutosulfokine, sulfated peptides that induce the proliferation of single mesophyll cells of Asparagus officinalis L. //Proc. Natl. Acad. Sci.USA, 1996. – V. 93. – P. 7623-7627.
16 Stirn S., Mordhorst A. P., Fuchs S., Lorz H. Molecular and biochemical markers for embryogenic potential and regenerative capacity of barley (Hordeum vulgare L.) cell cultures //Plant Science, 1995. – V. 106. - P. 195-206.
2 Marticke K.H., Reisener H.J., Fischer R., Hippe-Sanwald S. In situ detection of a fungal glycoprotein-elicitor in stem rust-infected susceptible and resistant wheat using immunogold electron microscopy //Eur. J. Cell Biol. – 1998. – V. 76, №4. – P. 265-273.
3 Menden B., Kohlhoff M., Moerschbacher B.M. Wheat cells accumulate a syringyl-rich lignin during the hypersensitive resistance response // Phytochemistry – 2006. – V. 21. – P. 75-80.
4 Ko Shimamoto, Utut Suharsono, wong Hann Ling, Masayuki Fujiwara, Ayako Nakashima, Kenichi Wakabayashi, Nguen Phuong Thao, Reinhard pinontoan, and Tsutomu Kawasaki. G-proteins in cell death and disease resistance of rice //Abstracts of the conference a plant apoptosis. – Colorado. – 2002. – P. 35.
5 Бишимбаева Н. К., Денебаева М. Г., Амирова А. К., Рахимова Е.В. Особенности гистологического строения рыхлых эмбриогенных каллусов ячменя // Известия АН РК, серия биологическая и медицинская. – 2001. – №1-2. – С.7-14.
6 Bishimbaeva N.K. A role for apoptosis and polysaccharides secretion in the long-term somatic embryogenesis of cereals //Bull. Of State Nikit. Bot. Gard. – 2002. – 86. – P. 47-52.
7 Бишимбаева Н.К., Рахимова Е.В., Амирова А.К., Рахимбаев И.Р. Электронно-микроскопическое изучение клеток эмбриогенных каллусов пшеницы // Известия НАН РК МОН РК. – 2007. – №1. – С. 41-48.
8 Бишимбаева Н.К. Электронно-микроскопическое изучение программированной гибели клеток в культуре ткани зерновых злаков // Доклады НАН РК, 2007. - №2. – С. 75-79.
9 Бишимбаева Н.К. Регуляция соматического эмбриогенеза и длительное поддержание тотипотентности в культуре тканей пшеницы и ячменя // Доклады НАН РК МОН РК. – 2007. – №4. – С. 71-76.
10 Бишимбаева Н.К. Цитофизиологические основы биотехнологии длительной регенерации растений в культуре тканей зерновых злаков /Автореф. дисс. на соиск. уч. ст. док. биол. наук., Алматы, 2007. – 38 с.
11 Murashige T., Scoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant., 1962. – V.15, №13. – P. 473-497.
12 Головацкая И.Ф., Карначук Р.А. Практикум по физиологии растений. Ростовые вещества. Учеб. пособие. – Томск, 1995. – 113 с.
13 Arjon J. van Hengel, Zewdie Tadesse, Peter Immerzeel, Henk Schols, Ab van Kammen, and Sacco C. de Vries. N-Acetylglucosamine and Clucosamine-Containing Arabinogalactan Proteins Control Somatic Embryogenesis //Plant Physiol., 2001. – V. 125. – P. 1880-1890.
14 Cammue B.E., De Bolle M.F., Schoots H.M., Terras F.R., Osborn R.W. Gene-encoded antimicrobial peptides from plants //Cuba Found Symp. 186. – I994. – P 91-101.
15 Matsubayashi Y., Sakagami, Y. Phutosulfokine, sulfated peptides that induce the proliferation of single mesophyll cells of Asparagus officinalis L. //Proc. Natl. Acad. Sci.USA, 1996. – V. 93. – P. 7623-7627.
16 Stirn S., Mordhorst A. P., Fuchs S., Lorz H. Molecular and biochemical markers for embryogenic potential and regenerative capacity of barley (Hordeum vulgare L.) cell cultures //Plant Science, 1995. – V. 106. - P. 195-206.
Загрузки
Как цитировать
Амирова, А. К., Сартбаева, И. Ә., & Бишімбаева, Н. К. (2019). Физиологическая активность экстрацеллюлярных белковых фракции клеточной культуры пшеницы. Вестник КазНУ. Серия биологическая, 45(3), 16–19. извлечено от https://bb.kaznu.kz/index.php/biology/article/view/1354
Выпуск
Раздел
БИОТЕХНОЛОГИЯ
