Особенности прямой регенерации отечественных сортов картофеля в культуре in vitro
DOI:
https://doi.org/10.26577//eb.2020.v83.i2.04Аннотация
В мировом производстве продукции растениеводства картофель занимает четвертое место, после пшеницы, риса и кукурузы. В связи с пищевой ценностью данной культуры необходимо применять современные методы биотехнологии, в частности, редактирования генома данной культуры. Для этого эффективная система прямой регенерации in vitro является важным этапом для дальнейшего успешного использования данной технологии.
В результате экспериментов подобраны оптимальные питательные среды для получения прямой регенерации из отечественных сортов. Из восьми вариантов сред с различными комбинациями и концентрациями фитогормонов, выявлена наиболее эффективная среда, содержащая 1,0 мг/л зеатина, 7 мг/л гибберелловой кислоты и 0,1 мг/л ИУК. Из всех сортов получены растений-регенеранты. Наибольшей регенерационной способностью обладали стеблевые экспланты по сравнению с листовыми. Количество микропобегов из одного экспланта варьировала от 1 до 25 в зависимости от сорта и варианта питательной среды для прямой регенерации. Таким образом, сорта картофеля казахстанской селекции обладали более высокой способностью к прямому органогенезу, образуя множество побегов на один эксплант.
Ключевые слова: прямая регенерация, картофель, отечественные сорта, регенерант, in vitro.
Библиографиялық сілтемелер
2 https://inbusiness.kz/ru/last/pereproizvodstvo-kartofelya-zhdet-kazahstan
3 Shpaar D. (2010) Kartofel' [Potato]. Torzhok. OOO «LVD Agrodelo», pp. 474.
4 Graskova I. A., Kuznetsov E.V., Zhivet'ev M.A., Chekurov V.M., Voinikov V.K. (2009) Detektsiya vliyaniya obrabotki analogami preparata «Silk» rastenii kartofelya v polevykh usloviyakh [Detection of the influence of processing potato plants in the field by analogues of the Silk preparation]. Journal of Stress Physiology & Biochemistry, vol. 5, no 1-2, pp. 39–44.
5 Yee S, Stevens B, Coleman S, Seabrook JEA, Li XQ (2001) High efficiency regeneration in vitro from potato petioles with intact leaflets. Am J Potato Res., vol. 78, pp. 151–157.
6 Yadav NR, Sticklen MB (1995) Direct and efficient plant regeneration from leaf explants of Solanum tuberosum L. cv. Bintje. Plant Cell Reports, vol. 14, pp. 645-647.
7 Kaur A.M., Reddy S., Kumar A. (2017) Efficient, one step and cultivar independent shoot organogenesis of potato. Physiol. Mol. Biol. Plants., vol. 23, pp. 461-469.
8 Javier Narváez-Vásquez, Clarence A Ryan (2002) The system in precursor gene regulates both defensive and developmental genes in Solanum tuberosum. Proceedings of the National Academy of Sciences, vol. 99, no 24, pp. 15818-21.
9 Ehsanpour A.A., Michael G.K. Jones (2000) Evaluation of direct shoot regeneration from stem explants of potato (Solanum tuberosum L.) cv. Delaware by Thidiazuron (TDZ). J. Sci. Tech. Agric., vol. 3, pp. 47-54.
10 Craig W, Gargano D, Scotti N, T T Nguyen (2006) Direct gene transfer in potato: A comparison of particle bombardment of leaf explants and PEG-mediated transformation of protoplasts. Plant Cell Reports, vol. 24, no 10, pp. 603-11.
11 Murashige T, Skoog F. (1962) A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant, vol 15, no 3, pp. 473—497.
12 Pershina L.A. (2005) Osnovnye metody kul'tivirovaniya in vitro v biotekhnologii rastenii: uchebnoe posobie [Basic in vitro cultivation methods in plant biotechnology: a training manual], vol. 138, no 4, pp. 138.
13 Turhan, H. (2004) Callus induction and growth in transgenic potato genotypes. African Journal of Biotechnology, vol. 3, pp. 375-378.
14 Roest S., Bokelmann G.S. (1976) Vegetative propagation of Solanum tuberosum L. in vitro // Potato Research, vol. 19, pp. 173-178.
15 Ibragimova SM, Romanova AV, Myzgina GK, Kochetov AV. (2018) The Morphogenic Potential of Siberian Potato Cultivars in Tissue Cultures. Vavilov Journal of Genetics and Breeding, vol. 22, no 3, pp. 316-320.
16 Campos N.A., Silva G.J., Paula M.F.Bd., Rodrigues T.B. (2016) A direct organogenesis protocol from shoot segments of Solanum tuberosum cv. Monalisa. Australian Journal of Crop Science, vol. 10, no. 07, pp. 964-968.
17 Kumlay A.M. (2014) Combination of the auxins NAA, IBA, and IAA with GA3 improves the commercial seed-tuber production of potato (Solanum tuberosum L.) under in vitro conditions. Biomed Res Int., vol. 2014, no. 439259.
18 Tara S.R., Krishnaprasad B.T., Anil. V.S.( 2017) Direct and Indirect Regeneration of Potato Cultivar Kufri Jyoti. Journal of Biotechnology and Biochemistry, vol. 3, no. 4, pp. 31-34.
