CHOOSING THE OPTIMAL CONCENTRATION OF INOCULUM FOR EFFECTIVE REDUCTION OF THE NUMBER OF ASIAN LOCUST LARVAE

Authors

  • U.T. Zhumatayeva South Kazakhstan University named after M. Auezov, Kazakhstan, Shymkent
  • B.A. Duisembekov Kazakh Scientific Research Institute of Plant Protection and Quarantine named after Zh. Zhiembayev Kazakhstan, Almaty

DOI:

https://doi.org/10.26577/eb.2022.v92.i3.013
        71 39

Keywords:

fungi, conidia, spore, entomopathogen, virulence, Beauveria bassiana, strain, Locusta migratoria migratoria L., inoculum, concentration.

Abstract

The article presents the results of experiments to determine the dose-mortality relationships for 10 selected strains of the fungus B. bassiana (mountain and steppe) on younger larvae of natural populations of Asian locusts. Working suspensions with four different titers of conidia (1x106, 5x106, 1x107, 5x107) were used. All tested strains related to Asian locust larvae showed high toxicity on the titers of working suspensions 1x107 and 5x107.According to the mortality rate and the rate of death of the organism, the host had the best effect even at all concentrations, showing the specificity of BSc1-15, BSc2-15, BTr1-16, BPit-16, BCa3(m)-09 among the strains. And the maximum biological activity was observed in the BSc1-15 strain on the 15th day, and the mortality rate of test insects in all variants was 100%. The lowest activity was shown by the strain BHy-09 in the range of 47.5-82.5%. The remaining strains showed moderate biological activity. At the same time, the mortality rate of Asian locust larvae in the control variant (without treatment) for 17 days was 17.5±4.78%. As a result of the experiments, we selected strains BSc1-15, BCa3(m)-09 from one of the mountainous and steppe regions, which have high toxicity (75-100%) to Asian locust larvae at relatively low concentrations (1x106 and 5x106 conidia/ml), because when using low titers (1x106 and 5x106), the effect of entomopathogenic fungal strains showed that they stretch over time. Based on the data of this experiment, it was concluded that the optimal titers of the working suspension of the fungus for controlling the number of larvae of Asian locusts are 1x107 and 5x107.

References

Искаков Н.С., Красникова В.М. Овощные вредители. - Алматы: Бастау, 1991.- 247 с.

Сикура А.И., Сикура Л.В. Энтомопатогены – грибы, бактерии, простейшие, нематоды.// - М., Наука, 1981.- 188 с.

Цибульска А.И. Применение рижского штамма гриба белой мускардины в борьбе с колорадским жуком. // Патология насекомых и клещей. - Рига, 1972.-155с.

Гораль В.М., Лаппа Н.В. Влияние боверина в разных концентрациях на личинок колорадского жука. / Сб. Защита растений, Киев. - 1973, вып.18-57с.

Леднев Г.Р., Борисов Б.А., Митина Г.В. Возбудители микозов насекомых. Пособие по диагностике. - С-Пб., 2003. -79 с.

Евлахова А.А. Энтомопатогенные грибы. Систематика, биология, практическое значение// - Л.: Наука, 1974. -260 с.

Вейзер Я. Микробиологический метод борьбы с вредными насекомыми.- М.: Колос, 1972.- 639 с.

Слямова Н.Д., Смагулова Ш.Б., Абдукадырова А.Д., Болатбекова Б.К., Успанов А.М. Экологические безопасные методы контроля численности колорадского жука с использованием энтомопатогенных грибов в условиях Юго-Востока Казахстана // Ізденістер, нəтижелер – Исследования, результаты. Алматы, № 4 (76) 2017. – С. 436-442.

Смагулова Ш.Б., Дуйсембеков Б.А., Слямова Н.Д., Успанов А.М., Леднев Г.Р., Левченко М.В., Энтомопатогенные анаморфные аскомицеты в популяциях жуковкороедов в Юго-Восточном Казахстане и оценка их специфичности // Ізденістер, нəтижелер – Исследования, результаты. №4 (76) 2017. - С. 449-457.

Faria MR, Wraight SP. Mycoinsecticides and mycoacaricides: a comprehensive list with worldwide coverage and international classification of formulation types // Biol Control (2007) 43:237–256 р.

Абдукерим Р.Ж., Туленгутова К.Н., Хидиров К.Р., Жунусова А.С., Алимкулова М.К. Биологическая активность энтомопатогенных грибов выделенных из короеда на насекомых из других систематических групп // Ізденістер, нəтижелер – Исследования, результаты. Алматы, № 4 (76) 2017. 222-228 б.

Burge M. N. The scope of fungi in biological control. // Fungi in biological control systems. Manchester - New York: Manchester University Press, 1988.- р. l-18.

Смагулова Ш.Б., Успанов А.М., Слямова Н.Д., Дуйсембеков Б.А. Зависимость смертности личинок колорадского жука от концентрации инокулюма штаммов энтомопатогенного гриба Вeauveria bassiana //Биологические науки Казахстана № 2, 2010. – 69-74с.

Новикова И.И. Микробиологические препараты в защите растений от вредителей и болезней // Интегрированная защита растений: стратегия и тактика. – Минск - Несвиж, 2011. – С.312-316

Коломиец Э.И. Вклад микробиологической науки в развитие агротехнологий в Республике Беларусь// Наука и инновации. – 2016. – № 6. – С.23-25. 202.

Коломиец Э.И. Биологические средства защиты растений как основа оздоровления и стабилизации агробиоценозов //Материалы XII Генеральной Ассамблеи ВПРС МОББ и Международной научной конференции «Биологическая защита растений: успехи, проблемы, перспективы». Информационный бюллетень ВПРС МОББ. – СПб., 2017. – 52. – С.172-179.

The Manual of Biocontrol Agents. – BCPC. – 2004. – 702 р.

Штерншис М.В. Энтомопатогены – основа биопрепаратов для контроля численности фитофагов // – Новосибирск: НГАУ, 2010. – 157 с.

Tabakovic-Tosic M.V., Goluboviccurgus, D. Tosic New technological methods in the integrated forest protection in the Republic of Serbia / // Integrated plant protection: strategy and tactics. – Nesvizh. – 2011. – P.49-55.

Серебров В.В., Глушак О.А., Леляк А.И., Алексеев А.А., Степанова Е.В. Влияние энтомопатогенного гриба Metarhizium anisopliae на ферментативную активность в органах и тканях гусениц сибирского шелкопряда Dendrolimus superanssibiricus Tsch. (Lepidoptera, Lasiocampidae) //Биологическая защита растений – основа стабилизации агроэкосистем. – Краснодар, 2004. – вып.3. – С.51-52.

Малярчук А.А., Цветкова В.П., Штерншис М.В. Оптимизация использования энтомопатогенного гриба Metarhizium anisopliae против колорадского жука//Биологическая защита растений основа стабилизации агроэкосистем. – Краснодар, 2008. – вып.5.- С.224-225.

Янковская У.Н., Прищепа Л.И., Угначёва Е.В. Биологическая активность энтомопатогенного гриба Lecanicillium lecanii по отношению к фитофагам тепличных культур// Интегрированная защита растений: стратегия и тактика. – Минск - Несвиж, 2011. – С.386-387.

Каменова А.С., Леднев Г.Р., Левченко М.В., Баймагамбетов Е.Ж., Макаров Е.М. Оценка биологической активности штаммов гриба Beauveria bassiana в полевых условиях // Инновационные экологически безопасные технологии защиты растений. Материалы Международной научной конференции (24-25 сентября 2015г.). – Алматы, 2015. – С.604-609.

Леднёв Г.Р, Павлюшин В.А., Левченко М.В., Успанов А.М. Современные представления о разработке биологических препаратов на основе энтомопатогенных анаморфных аскомицетов для снижения численности вредных членистоногих// Инновационные экологически безопасные технологии защиты растений. Материалы Международной научной конференции (24-25 сентября 2015 г.). – Алматы, 2015. – С.622-626.

Смагулова Ш.Б., Макаров Е.М., Баймагамбетов Е.Ж., Абдукадырова А.Д., Болатбекова Б.Х. Определение эффективности штаммов энтомопатогенного гриба рода Beauveria в подавлении численности личинок колорадского жука //Инновационные экологически безопасные технологии защиты растений. Материалы Международной научной конференции (24-25 сентября 2015 г.). – Алматы, 2015. – С.640-643.

Tserodze M., Meskhi N.Biological control of winter moth // Innovative and ecologically safe technologies in plant protection. – Almaty. – 2015. – P.246-248.

Войтка Д.В., Янковская Е.Н., Юзефович Е.К., Герасимович М.С. Коллекционный фонд микроорганизмов как научная основа биотехнологических разработок для защиты растений // Состояние и перспективы защиты растений. Материалы 232 Международной научно-практической конференции. – Минск, 2016. – С.51-54.

Малюга А.А. Влияние новых биопрепаратов на оздоровление картофеля от колорадского жука и продуктивность культуры в лесостепи Западной Сибири / А.А. Малюга, Н.С. Чуликова // Биологическая защита растений – основа стабилизации агроэкосистем. – Краснодар, 2016. – вып.9. – С.385-388.

Прищепа Л.И., Герасимович М.С.. Биологическая активность энтомопатогенных грибов, выделенных в лесных биотопах Республики Беларусь //Состояние и перспективы защиты растений. Материалы Международной научно-практической конференции. – Минск, 2016. – С.107-109.

Цветкова В.П., Шпатова Т.В., Леляк А.А., Штерншис М.В.. Влияние энтомопатогенного гриба Beauveria bassiana на болезни картофеля и ягодных культур// Биологическая защита растений – основа стабилизации агроэкосистем. – Краснодар, 2016. – вып.9. – С.311-313.

Янковская Е.Н., Войтка Д.В. Биологический контроль фитофагов тепличных культур препаратом на основе энтомопатогенного гриба Lecanicillium lecanii Gams & Zare // Биологическая защита растений – основа стабилизации агроэкосистем. – Краснодар, 2016. – вып.9. – С.330-332.

Нетрусова Н. Практикум по микробиологии: Учеб. пособие / Под ред. Нетрусова. –М.: Изд. центр «Академия». -2005. - 608 с.

Егорова Н.С. Промышленная микробиология: Учеб. пос. для вузов. Под ред. Егорова Н.С. – М.: Высш. шк. -1989. - 688 с.

Zhumatayeva U.T., Duisembekov B.A., Begalieva A.M., Sabdenova U.O., Yerkekulova K.K.,, Screening of collection strains (collections) of entomopathogenic fungi against asian locusts for signs of virulence // Ізденістер, нəтижелер – Исследования, результаты. №1 (89) 2021. - c. 225-235.

Jaronski S. T. S. T. Ecological factors in the inundative use of fungal Entomopathogens// BioControl (2010) 55:159–185 DOI 10.1007/s10526-009-9248-3 Received: 1 September 2009 / Accepted: 19 October 2009 / Published online: 24 November 2009, US Government 2009.

Downloads

Published

2022-09-30

How to Cite

Zhumatayeva У. ., & Duisembekov Б. . (2022). CHOOSING THE OPTIMAL CONCENTRATION OF INOCULUM FOR EFFECTIVE REDUCTION OF THE NUMBER OF ASIAN LOCUST LARVAE. Experimental Biology, 92(3), 148–158. https://doi.org/10.26577/eb.2022.v92.i3.013