ВЛИЯНИЕ ОДИНОЧНЫХ И КОМБИНИРОВАННОГО АБИОТИЧЕСКИХ СТРЕССОВ НА ИЗМЕНЕНИЕ БИОСИНТЕЗА ФЕРМЕНТАТИВНЫХ АНТИОКСИДАНТОВ У CHENOPODIUM QUINOA L.

Авторы

  • А.Н. Зорбекова Казахский Национальный университет имени аль-Фараби, Казахстан, Алматы
  • Н.В. Терлецкая Казахский Национальный университет имени аль-Фараби, Казахстан, Алматы
  • Е.В. Шуйская Институт Физиологии растений им.К.А. Тимирязева Российской Академии Наук, Россия, Москва
  • Н.К. Корбозова Институт генетики и физиологии, Казахстан, Алматы

DOI:

https://doi.org/10.26577/eb.2024.v98.i1.015
        85 86

Ключевые слова:

киноа, ферментативные антиоксиданты, осмотический стресс, солевой стресс, комбинированный стресс, эустресс, дистресс

Аннотация

Представлено исследование изменения активности таких ферментативных антиоксидантов, как супероксиддисмутаза и пероксидаза у молодых растений Chenopodium quinoa L в ответ на осмотический, солевой и комбинированный стрессы. Исследование демонстрирует связь между уровнем антиоксидантной защиты в системе Chenopodium quinoa L и ее способностью справляться с различными видами стресса. Результаты, полученные при комбинированном воздействии 200 мМ NaCl + PEG на молодые растения киноа, свидетельствуют о переходе от молодых растений киноа эустресса к дистрессу

Библиографические ссылки

Lin M., Han P., Li, Y., Wang W., Lai D., Zhou L. Quinoa secondary metabolites and their biological activities or functions // Molecules. – 2019.- Vol. 24.- 2512p.

Тимохин А.К. Сравнительная анатомия вегетативных органов представителей семейства Amaranthaceae Juss// 1984-Москва.

Барабанов Е. И. Ботаника: учебник для студ. высш. учеб. заведений. — М.: Издательский центр «Академия».- 2006. — С. 247. — 448 с.

Wurtzel E.T., Kutchan T.M., Plant metabolism, the diverse chemistry set of the future //Science.- 2016, Vol. 353- 1232p.

Tasiu I., Stress and defense responses in plant secondary metabolites production // Biol. Res.- 2019, Vol. 52.

Hameed A., Gulzar S., Aziz I., Hussain T., Gul B., Khan M.A., Effects of salinity and ascorbic acid on growth, water status and antioxidant system in a perennial halophyte // AoB Plants.- 2015, Vol. 7: plv004.

Baral M., Datta A., Chakraborty S., Chakraborty P., Pharmacognostic studies on stem and leaves of Amaranthus spinosus Linn // Int. J. Appl. Biol. Pharm. Technol.-2011, Vol. 2, p. 41.

Dumanović J., Nepovimova E., Natić M., Kuča K., Jaćević V., The significance of reactive oxygen species and antioxidant defense system in plants: a concise overview// Front. Plant Sci.- 2021, Vol. 11: 552969p.

Tsai T.-Y, Lin R.-J, Liu C., Tseng Y.-P, Chan, L.-P, Liang C.-H Djulis supplementation against oxidative stress and ultraviolet radiation-induced cell damage: The influence of antioxidant status and aging of skin in healthy subjects, J. Cosmet // Dermatol.- 2021, Vol. 21, 2945p.

Sharma Pallavi., Jha Ambuj Bhushan., Dubey Rama Shanker., Pessarakli, Mohammad. Reactive Oxygen Species, Oxidative Damage, and Antioxidative Defense Mechanism in Plants under Stressful Conditions// Journal of Botany.- 2012, 1–26p.

Gins M.S, Gins V.K, Motyleva S.M, Kulikov I.M, Medvedev S.M, Pivovarov V.F, Mertvishcheva M.E, Metabolites with antioxidant and protective functions from leaves of vegetable amaranth (Amaranthus tricolor L), Sel’skokhozyaistvennaya biologiya //Agricultural Biology.- 2017.- Vol. 52, p. 1030.

Selmar D., Kleinwächter M., Abouzeid S., Yahyazadeh M., Nowak M., The impact of drought stress on the quality of spice and medicinal plants. In: Ghorbanpour M., Varma A // Medicinal Plants and Environmental Challenges, Springer.- 2017.- -Vol. 17, p.159.

Terletskaya N.V., Seitimova G.A., Kudrina N.O., Meduntseva N.D., Ashimuly K. The reactions of photosynthetic capacity and plant metabolites of Sedum hybridum L. in response to mild and moderate abiotic stresses// Plants. -2022.- Vol. 11, p.828.

He M., He C.Q., Ding N.Z. Abiotic stresses: General defenses of land plants and chances for engineering multistress tolerance// Front. Plant Sci.- 2018. -Vol. 9, 1771p.

Bhargava A., Srivastava S. Response of Amaranthus sp. to salinity stress: a review, Emerging Research in Alternative Crops, Cham // Springer-Verlag.- 2020.- p. 245.

Derbali W., Manaa A., Goussi R., Derbali I., Abdelly C., Koyro H.-W. Post-stress restorative response of two quinoa genotypes differing in their salt resistance after salinity release// Plant Physiol. Biochem.- 2021.- Vol. 164, p. 222.

Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Anal. Biochem.- 1976.- vol. 72, p. 248.

Shevyakova N.I., Stetsenko L.A., Meshcheryakov A.B., Kuznetsov Vl.V. The activity of the peroxidase system in the courseof stress-induced CAM development, Russ. J // Plant Physiol.- 2002.- vol. 49, p. 598.

Tovmasyan A., Maia C.G., Weitner T., Carballal S., Sampaio R.S., Lieb D., Ghazaryan R. Ivanovic-Burmazovic, I., Ferrer-Sueta, G., Radi, R., Reboucas, J.S., Spasojevic, I., Benov, L., Batinic-Haberle, I., A comprehensive evaluation of catalase-like activity of different classes of redox-active therapeutics, Free Radic // Biol. Med.- 2015.- Vol. 86, p. 308.

Slimani N., Arraouadi S., Hajlaoui H., Borgi M.A., Boughattas N.E.H., De Feo V. Snoussi, M., The impact of greenhouse and field growth conditions on Chenopodium quinoa Willd accessions’ response to salt Stress: a comparative approach // Agronomy.- 2023.-Vol. 13, 2303p.

Gaweł S, Wardas M, Niedworok E, Wardas P. Dialdehyd malonowy (MDA) jako wskaźnik procesów peroksydacji lipidów w organizmie [Malondialdehyde (MDA) as a lipid peroxidation marker] //Wiad Lek.- 2004.- vol. 57, p. 453.

Soriano G., Kneeshaw S., Jimenez-Aleman G., Zamarre A.M., Franco-Zorrilla J.M., Rey-Stolle M.F., Barbas C., Garcıa-Mina J.M., Solano R. An evolutionarily ancient fatty acid desaturase is required for the synthesis of hexadecatrienoic acid, which is the main source of the bioactive jasmonate in Marchantia polymorpha // New Phytol.-2022.- Vol. 233, p.1401.

Terletskaya, N.V., Erbay, M., Zorbekova, A.N., Prokofieva, M.Yu., Saidova, L.T., Mamirova, A., Influence of osmotic, salt and combined stress on morphophysiological parameters of Chenopodium quinoa photosynthetic organs, Agriculture, 2023, vol. 13, p. 1.

Beauchamp C., Fridovich I., Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels // Anal. Biochem.- 1971.- Vol. 44, p. 276.

Hajihashemi S., Jahantigh O., Alboghobeish S. The redox status of salinity-stressed Chenopodium quinoa under salicylic acid and sodium nitroprusside treatments. Front // Plant Sci.-2022.-Vol. 13, 1030938p.

Gill S.S., Tuteja N. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants // Plant Physiol. Biochem.- 2010.- Vol. 48, p.909.

Yue Y., Su L., Hao M., Li W., Zeng L., Yan S. Evaluation of peroxidase in herbal medicines based on an electrochemical sensor // Front. Chem.- 2021.- vol. 9, 709487.

Загрузки

Как цитировать

Зорбекова, А. ., Терлецкая, Н. ., Шуйская, Е. ., & Корбозова, Н. . (2024). ВЛИЯНИЕ ОДИНОЧНЫХ И КОМБИНИРОВАННОГО АБИОТИЧЕСКИХ СТРЕССОВ НА ИЗМЕНЕНИЕ БИОСИНТЕЗА ФЕРМЕНТАТИВНЫХ АНТИОКСИДАНТОВ У CHENOPODIUM QUINOA L. Вестник КазНУ. Серия биологическая, 98(1), 178–186. https://doi.org/10.26577/eb.2024.v98.i1.015