Изучение состава микробоценозов ризосферы облепихи крушиновидной, растущей в экосистемах Алматинской области

Авторы

  • G. D. Ultanbekova Институт микробиологии и вирусологии КН МОН РК, Республика Казахстан, г. Алматы
  • L. P. Trenozhnikova Институт микробиологии и вирусологии КН МОН РК, Республика Казахстан, г. Алматы
  • A. S. Balgimbaeva Институт микробиологии и вирусологии КН МОН РК, Республика Казахстан, г. Алматы
  • R. Sh. Galimbaeva Институт микробиологии и вирусологии КН МОН РК, Республика Казахстан, г. Алматы
  • Zh. Baydyldaeva Институт микробиологии и вирусологии КН МОН РК, Республика Казахстан, г. Алматы
  • A. A. Nysanbayeva Институт микробиологии и вирусологии КН МОН РК, Республика Казахстан, г. Алматы
  • G. M. Salkhozhaeva Евразийский национальный университет им. Л.Н. Гумилева, Республика Казахстан, г. Астана
        73 65

Ключевые слова:

актиноризные растения, облепиха крушиновидная, микробоценоз, хемоорганотрофы, олиготрофы, актиномицеты.

Аннотация

В Казахстане наиболее распространена облепиха крушиновидная, полезные свойства которой свидетельствуют о необходимости расширения её плантаций и повышения её продуктивности. Ризосфера облепихи крушиновидной может быть источником получения микроорганизмов с высоким биотехнологическим потенциалом и её исследование является актуальной проблемой.

Изучен состав микробоценозов ризосферной зоны облепихи крушиновидной, полученной из разных экосистем Алматинской области. Проведенные исследования показали, что ризосфера облепихи крушиновидной заселена разнообразными эколого-трофическими группами микроорганизмов, среди которых доминирующее положение занимают хемоорганотрофы - 1,2·107-1,3·108 КОЕ/г почвы,  актиномицеты - 1,5-7,7·105 КОЕ/г почвы  и олиготрофы - 6,7·105 -3,0·106 КОЕ/г почвы.  В ризосфере облепихи количество азотфиксирующих микроорганизмов рода Azotobacter составляет 20-80%, в контрольных образцах – 8-50%.

В ризосфере облепихи крушиновидной всех исследованных типов почв наблюдалось увеличение разнообразия качественного состава актиномицетов, которое проявлялось, прежде всего, в появлении окрашенных форм актиномицетов серий Violaceus, Ruber и Coerulescens.

Библиографические ссылки

Литературы

1 Березин Л.В., Сапаров А.С., Кан В.М., Шаяхметов М.Р. Технология комплексной мелиорации экосистем России и Казахстана.-Алматы: Спринт.- 2013.- С.11-12.
2 Саданов А.К., Смирнова И.Э. Целлюлитические бактерии и их применение в сельском хозяйстве. - Алматы: Литера. - 2015. - 260 с.
3 Wall L.G. The actinorhizal symbiosis // Journal of Plant Growth Regulation. – 2000. - Vol. 19, N 2. – P. 167–182.
4 Schwencke J., Carú M. Advances in actinorhizal symbiosis: host plant-Frankia interactions, biology, and applications in arid land reclamation. A review // Arid Land Research and Management. – 2001. - Vol. 15, № 4. – P. 285–327.
5 Baker, D., and J. G. Torrey. Characterization of an effective actinorhizal microsymbiont, Frankia sp. AvcI1 (Actinomycetales) // Journal of Applied Microbiology – 1980. - Vol. 26. - Р 1066-1071.
6 Bouras N., Meklat A., Toumatia O., Mokrane S., Holtz M.D., Strelkov S.E., Sabaou N. Bioactive potential of a new strain of Streptomyces sp. PP14 isolated from Canadian soil // Journal of Applied Microbiology – 2013. - Vol. 7, N 25. – P. 3199-3208.
7 Diagne N., Arumugam K., Ngom M., Nambiar-Veetil M., Franche C., Kumar Narayanan K., Laplaze L. Use of Frankia and Actinorhizal Plants for Degraded Lands Reclamation // BioMed Research International, 2013. – Vol. 21, N 1. – P. 151–165.
8 Sayed W.F. Improving Casuarina growth and symbiosis with Frankia under different soil and environmental conditions-review // Folia Microbiologica. – 2011. - Vol. 56, N. 1. – P. 1–9.
9 Berry, A. M., and J. G. Torrey. Root hair deformation in the infection process of Alnus rubra // Journal of Applied Microbiology. – 1983. Vol. 61.- P 2863-2976.
10 Baker, D. D., and B. C. Mullin. Diversity of Frankia nodule endophytes of the actinorhizal shrub Ceanothus as assessed by RFLP patterns from single nodule lobes // Soil. Biol. Biochem. – 1994. Vol. 26.- P 547-552.
11 Berg R.H., Liu L., Dawson J.O., Savka A.M. Induction of Pseudoactinorhizae by the Plant Pathogen Agrobacterium rhizogenes // Plant Physiology.- 1992. Vol. 98.-P777–779.
12 Echbab H., Arahou M., Ducousso M. et al. Successful nodulation of Casuarina by Frankia in axenic conditions // Journal of Applied Microbiology. – 2007. - Vol. 103, N. 5. – P. 1728–1737.
13 Семенов С.М. Лабораторные среды для актиномицетов и грибов. - М.: Агропромиздат, 1990. - 283 с.
14 Урбах В.Ю. Статистический анализ в биологических и медицинских исследованиях.
- М.: Медицина, 1975. - 295 с.

References

1 Berezin LV, Saparov AS, Kan VM, SHayahmetov MR (2013) Technology of complex reclamation of Russia and Kazakhstan ecosystems [Tekhnologiya kompleksnoj melioracii ehkosistem Rossii i Kazahstana]. ISBN: 978-601-80286-3-2. (In Russian)
2 Sadanov AK, Smirnova IEH (2015) Tsellyuliticheskie bacteria and their use in agriculture [Cellyuliticheskie bakterii i ih primenenie v sel'skom hozyajstve]. ISBN:978-604-7437-04-6. (In Russian)
3 Wall LG (2000) The actinorhizal symbiosis, Journal of Plant Growth Regulation. 19: 167–182.
4 Schwencke J., Carú M. (2001) Advances in actinorhizal symbiosis: host plant-Frankia interactions, biology, and applications in arid land reclamation. A review, Arid Land Research and Management, 15(4): 285–327.
5 Baker D, Torrey JG (1980) Characterization of an effective actinorhizal microsymbiont, Frankia sp. AvcI1 (Actinomycetales), Journal of Applied Microbiology, 26:1066-1071.
6 Bouras N, Meklat A, Toumatia O, Mokrane S, Holtz D, Strelkov E, Sabaou N (2013) Bioactive potential of a new strain of Streptomyces sp. PP14 isolated from Canadian soil Journal of Applied Microbiology, 7(25): 3199-3208.
7 Diagne N, Arumugam K, Ngom M, Nambiar-Veetil M, Franche C, Kumar Narayanan K, Laplaze L (2013) Use of Frankia and Actinorhizal Plants for Degraded Lands Reclamation, BioMed Research International, 21 (1): 151–165.
8 Sayed WF (2011) Improving Casuarina growth and symbiosis with Frankia under different soil and environmental conditions-review, Folia Microbiologica, 56 (1): 1–9.
9 Berry A M, Torrey J G (1983) Root hair deformation in the infection process of Alnus rubra, Journal of Applied Microbiology, 61: 2863-2976.
10 Baker D D, Mullin BC (1994) Diversity of Frankia nodule endophytes of the actinorhizal shrub Ceanothus as assessed by RFLP patterns from single nodule lobes, Soil. Biol. Biochem, 26:547-552.
11 Berg RH, Liu L, Dawson JO, Savka AM (1992) Induction of Pseudoactinorhizae by the Plant Pathogen Agrobacterium rhizogenes, Plant Physiology, 98: P777–779.
12 Echbab H, Arahou M, Ducousso M (2007) Successful nodulation of Casuarina by Frankia in axenic conditions, Journal of Applied Microbiology, 103: 1728–1737.
13 Semenov SM (1990) Laboratory environment for fungi and actinomycetes [Laboratornye sredy dlya aktinomicetov i gribov]. Agropromizdat, Moscow, Russia. (In Russian)
14 Urbach VY (1975) Statistical analysis in biological and medical research [Statisticheskij analiz v biologicheskih i medicinskih issledovanijah]. Medicine, Moscow, Russia. (In Russian)

Загрузки

Как цитировать

Ultanbekova, G. D., Trenozhnikova, L. P., Balgimbaeva, A. S., Galimbaeva, R. S., Baydyldaeva, Z., Nysanbayeva, A. A., & Salkhozhaeva, G. M. (2016). Изучение состава микробоценозов ризосферы облепихи крушиновидной, растущей в экосистемах Алматинской области. Вестник КазНУ. Серия биологическая, 67(2), 208–215. извлечено от https://bb.kaznu.kz/index.php/biology/article/view/1196

Выпуск

Том 67 № 2 (2016): Вестник КазНУ. Cерия биологическая

Раздел

МИКРОБИОЛОГИЯ

Наиболее читаемые статьи этого автора (авторов)