Оптимизация технологии клонального микроразмножения для сохранения генофонда растений груши (P.communis L.) / Алмұрт генқорын сақтау үшін клондық микрокөбейтуді оңтайландыру
167 44
Кілттік сөздер:
алмұрт, қоректік орталар, микроклондап көбейту, ұлпаларды өсіру, апекс, эксплант, груша (P.communis L.), питательные среды, клональное микроразмножение, культура тканей,Аннотация
Алмұрт сорттарының сапрофиттік микрофлорадан тиімді зарарсыздандырылу тәсілі тағайындалды, және оңтайлық жасанды қоректік орталарына in vitro және микрокөбейту өсімдіктері енгізілді. Көшектерді тиімді зарарсыздандыру үшін мына антисептиктердің біреуін қолданады: а) HgCl2 0,1% экспозицияда 10-15 мин; б) «Доместос» сусыз – 3 мин. Алмұрт өсімдіктерді in vitro жағдайына еңгізу үшін тиімді МС қоректік орталарда ГК-0,5 мг/л, ИМК-0,1 мг/л болу керек. Алмұрт экспланттардың микрокөбейту үшін тиімді жасандық қоректік орта МС және гармондар: БАП-0,6 мг/л; ИМК-0,1 мг/л; ГК-0,2 мг/л; сахароза-30 г/л. Определены стерилизующие препараты и их концентрации для дезинфекции эксплантов от сапрофитной микрофлоры, оптимизирован состав питательных сред для введения в культуру in vitro и клонального микроразмножения груши. Экспланты эффективно стерилизовать одним из антисептиков: а) HgCl2 0,1% в экспозиции 10-15 мин; б) «Доместос» без разведения – 3 мин. Для введения в культуру in vitro эксплантов груши оптимальна среда МС, содержащая ИМК-0,1 мг/л, ГК-0,5 мг/л, а для микроклонального размножения – среда MС, с БАП-0,6 мг/л; ИМК-0,1 мг/л; ГК-0,2 мг/л; сахарозой-30 г/л. На искусственных питательных средах in vitro размножено 23 сорта груши (P.communis L.) и 2 дикорастущие формы (P. pyraster L., P. regelii Rehd). Коэффициент размножени колебался от 8 до 9 в зависимости от генотипа.Библиографиялық сілтемелер
Литература
1. Митрофанова О.В., Славгородская-Курпиева Л.Е., Митрофанова И.В., Лукичева Л.А. Диагностика вирусных болезней и биотехнологические приемы получения безвирусного посадочного материала косточковых плодовых культур. – Ялта: Крымпресс, 2000. – 45 с.
2. Лесникова Н.П., Сусский А.Н., Горина В.М. Микроразмножение in vitro алычи (Рrunus serasifera Ehrh.) как возможность ускорения селекционного процесса // Бюл. Никит. ботан. сада. – 2002. – Вып. 86. – С. 57-60.
3. Расторгуев С.Л. Совершенствование селекционного процесса плодовых и ягодных растений на основе цитологических методов и культуры изолированных тканей: дис. … док. с/х. наук: 06.01.05. – Мичуринск РФ: Наукоград, 2008.
4. Reed B.M., Wada S., DeNoma J., Niedz R.P. Improving in vitro mineral nutrition for diverse pear germplasm // In vitro Cell. Dev. Biol. Plant. – 2013. – V. 49. – С. 343-355.
5. Расторгуев С.Л. Культура изолированных тканей и органов в селекции плодовых растений. – изд-во МичГАУ. – Мичуринск, 2009. – 170 с.
6. Зленко В.А., Трошин Л.П., Котиков И.В. Размножение оздоровленного посадочного материала винограда в культуре in vitro // Садоводство и виноградарство. – 2005. – № 1. – С. 21-23.
7. Калинин Ф.А., Кушнир Г.П., Сарнацкая В.В. Технология микроклонального размножения растений. – Киев, 1992. – 228 с.
8. Viss P.R., Brooks E.M., Driver J.A. A simplified method for the control of bacterial contamination in woody plant tissue culture // In Vitro Cell. Dev. Biol. – 1991. – V. 27. – P. 42.
9. Ташматова Л.В. Клональное микроразмножение и депонирование перспективных форм груши: автореф. … канд. с-х. наук: 06.01.01. – Орел, 2012. – 25 с.
1. Митрофанова О.В., Славгородская-Курпиева Л.Е., Митрофанова И.В., Лукичева Л.А. Диагностика вирусных болезней и биотехнологические приемы получения безвирусного посадочного материала косточковых плодовых культур. – Ялта: Крымпресс, 2000. – 45 с.
2. Лесникова Н.П., Сусский А.Н., Горина В.М. Микроразмножение in vitro алычи (Рrunus serasifera Ehrh.) как возможность ускорения селекционного процесса // Бюл. Никит. ботан. сада. – 2002. – Вып. 86. – С. 57-60.
3. Расторгуев С.Л. Совершенствование селекционного процесса плодовых и ягодных растений на основе цитологических методов и культуры изолированных тканей: дис. … док. с/х. наук: 06.01.05. – Мичуринск РФ: Наукоград, 2008.
4. Reed B.M., Wada S., DeNoma J., Niedz R.P. Improving in vitro mineral nutrition for diverse pear germplasm // In vitro Cell. Dev. Biol. Plant. – 2013. – V. 49. – С. 343-355.
5. Расторгуев С.Л. Культура изолированных тканей и органов в селекции плодовых растений. – изд-во МичГАУ. – Мичуринск, 2009. – 170 с.
6. Зленко В.А., Трошин Л.П., Котиков И.В. Размножение оздоровленного посадочного материала винограда в культуре in vitro // Садоводство и виноградарство. – 2005. – № 1. – С. 21-23.
7. Калинин Ф.А., Кушнир Г.П., Сарнацкая В.В. Технология микроклонального размножения растений. – Киев, 1992. – 228 с.
8. Viss P.R., Brooks E.M., Driver J.A. A simplified method for the control of bacterial contamination in woody plant tissue culture // In Vitro Cell. Dev. Biol. – 1991. – V. 27. – P. 42.
9. Ташматова Л.В. Клональное микроразмножение и депонирование перспективных форм груши: автореф. … канд. с-х. наук: 06.01.01. – Орел, 2012. – 25 с.
Жүктелулер
Как цитировать
Turdiyev Т., Kovalchuk, I., Uspanova, G., Chukanova, N., & Frolov, S. (2016). Оптимизация технологии клонального микроразмножения для сохранения генофонда растений груши (P.communis L.) / Алмұрт генқорын сақтау үшін клондық микрокөбейтуді оңтайландыру. ҚазҰУ Хабаршысы. Биология сериясы, 65(3), 356–362. вилучено із https://bb.kaznu.kz/index.php/biology/article/view/1138
Шығарылым
Бөлім
БИОТЕХНОЛОГИЯ
