ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНЫЙ ЦИТОКИНОВЫЙ ОТВЕТ ИММУНОКОМПЕТЕНТНЫХ КЛЕТОК НА ИНДУКЦИЮ РЕЗИСТЕНТНОЙ, РЕВЕРТАНТНОЙ И ЧУВСТВИТЕЛЬНОЙ ESCHERICHIA COLI
DOI:
https://doi.org/10.26577/eb.2022.v92.i3.06Ключевые слова:
цитокины, резистентный, ревертантный, чувствительныйАннотация
Работа посвящена изучению влияния фенотипа резистентности субкультур E.coli на функциональность эволюционно-консервативных, ассоциированных с чужеродностью антигенов (PAMP) и особого класса патоген-ассоциированных молекулярных паттернов, которые обозначают жизнеспособность микробов (vitaPAMP) на иммунокомпетентные клетки периферической крови человека. С помощью иммуноферментного анализа проведен сравнительный анализ мононуклеарного (PBMC), моноцитарного (MON) и лимфоцитарного (LYM) цитокинового ответа на индукцию живыми и фиксированными клетками резистентной, ревертантной и чувствительной субкультур E.coli. Показано, что PAMP структуры фиксированных клеток изученных субкультур E.coli преимущественно распознаются PBMC человека. Тогда как патоген-ассоциированные молекулярные паттерны живых клеток E.coli распознаются разными клетками-мишенями, так на vitaPAMP структуры резистентной субкультуры реагируют преимущественно PBMC, на vitaPAMP структуры ревертантной E.coli – MON человека, на vitaPAMP структуры чувствительного штамма и PBMC, и MON реагируют с одинаковой интенсивностью. В целом, модели оркестровки цитокинов иммунокомпетентными клетками обусловливались фенотипом резистентности / чувствительности E.coli.
Библиографические ссылки
Drlica K. The mutant selection window and antimicrobial resistance // Antimicrobial Chemotherapy. – 2003. – Vol. 52. – P. 11-17.
Pamer E.G. Immune responses to commensal and environmental microbes // Nat. Immunol. – 2007. – Vol. 8. – P. 1173-1178.
Happel K.I., Bagby G.J., Nelson S. Host defense and bacterial pneumonia // Semin. Respir. Crit. Care Med. – 2004. – Vol. 25, No 1. – P. 43-52.
Mueller M., de la Pena A., Derendorf H. Issues in pharmacokinetics and pharmacodynamics of
anti-infective agents: kill curves versus MIC // Antimicrob. Agents Chemother. – 2004. – Vol. 48,
No 2. – P. 369-377.
DeRyke C.A., Lee S.Y., Kuti J.L., Nicolau D.P. Optimising dosing strategies of antibacterials utilising pharmacodynamic principles: impact on the development of resistance // Drugs. – 2006. – Vol. 66,
No 1. – P. 1-14.
Ambrose P.G., Bhavnani S.M., Rubino C.M., Louie A., Gumbo T., Forrest A. et al. Pharmacokinetics-pharmacodynamics of antimicrobial therapy: it's not just for mice anymore // Clin. Infect. Dis. – 2007. – Vol. 44, No 1. – P. 79-86.
Zhao X., Drlica K. A unified anti-mutant dosing strategy // Antimicrob. Chemother. – 2008. – Vol. 62, No 3. – P. 434-436.
Jumbe N., Louie A., Leary R., Liu W., Deziel M.R., Tam V.H. et al. Application of a mathematical model to prevent in vivo amplification of antibiotic-resistant bacterial populations during therapy // Clin. Invest. – 2003. – Vol. 112, No 2. – P. 275-285.
Drlica K., Zhao X.L. Is ‘dosing-to-cure’ appropriate in the face of antimicrobial resistance? // Rev. Med. Microbiol. – 2004. – Vol. 15, No 2. – P. 73-80.
Tumbarello M. et al. Predictors of mortality in patients with bloodstream infections caused by
extended-spectrum-beta-lactamase-producing Enterobacteriaceae: importance of inadequate initial antimicrobial treatment // Antimicrob. Agents Chemother. – 2007. – Vol. 51, No 6. – P. 1987-1994.
Kumarasamy K.K. et al. Emergence of a new antibiotic resistance mechanism in India, Pakistan, and the UK: a molecular, biological, and epidemiological study // Lancet Infect. Dis. – 2010. – Vol. 10, No 9. – P. 597-602.
Fleming A. Penicillin. Nobel Lectures. https://www.nobelprize.org/?p=12848&pagespeed=noscript?pagespeed=noscript. 11.08.2021.
World Health Organization 2012. The evolving threat of antimicrobial resistance: options for action. http://whqlibdoc.who.int/publications/2012/9789241503181_eng.pdf. 11.08.2021.
Cotroneo N., Rubio A., Critchley I.A., Pillar C., Pucci M.J. In vitro and in vivo characterization of tebipenem, an oral carbapenem // Antimicrob. Agents Chemother. – 2020. – Vol. 64, No 8.
Zhang D., Chen J., Jing Q., Chen Z., Ullah A., Jiang L., Zheng K., Yuan C. and Huang M. Development of a Potent Antimicrobial Peptide With Photodynamic Activity // Front. Microbiol. – 2021. – Vol. 12.
Volodina G.V., Davtyan T.K., Kulmanov M.E., Dzhumagazieva A.B., Tursunova S.K., Abekova A.O. et al. The effect of antibiotic-resistant and sensitive Escherichia coli on the production of pro-inflammatory cytokine response by human peripheral blood mononuclear cells // J. Clin. Cell Immunol. – 2017. –
Vol. 8, No 522.
Korotetskiy I.S., Joubert M., Taukobong S. et al. Complete Genome Sequence of a Multidrug-Resistant Strain, Escherichia coli ATCC BAA-196, as a Model for Studying Induced Antibiotic Resistance Reversion // Microbiol. Resour. Announc. – 2020. – Vol. 9, No 50.
Mourao-Sa D., Roy S., Blander J.M. Vita-PAMPs: signatures of microbial viability // Adv. Exp. Med. Biol. – 2013. – Vol. 785. – P. 1-8.
Schnare M., Barton G.M., Holt A.C., Takeda K., Akira S., Medzhitov R. Toll-like receptors control activation of adaptive immune responses // Nat. Immunol. – 2001. – Vol. 2. – P. 947-950.
Kawai T., Akira S. Toll-like receptors and their crosstalk with other innate receptors in infection and immunity // Immunity. – 2011. – Vol. 34. – P. 637-650.
Akira S., Hemmi H. Recognition of pathogen-associated molecular patterns by TLR family // Immunol. Lett. – 2003. – Vol. 85. – P. 85-95.
Granucci F., Feau S., Zanoni I., Pavelka N., Vizzardelli C., Raimondi G. et al. The immune response is initiated by dendritic cells via interaction with microorganisms and interleukin-2 production // J. Infect. Dis. – 2003. – Vol. 187. – P. 346-350.
Sharpe A.H. Mechanisms of costimulation // Immunol. Rev. – 2009. – Vol. 229. – P. 5-11.
Medzhitov R. Recognition of microorganisms and activation of the immune response // Nature. –
– Vol. 449. – P. 819-826.
Blander J.M., Sander L.E. Beyond pattern recognition: five immune checkpoints for scaling the microbial threat // Nature Rev. Immunology. – 2012. – Vol. 12. – P. 215-225.
Akira S., Uematsu S., Takeuchi O. Pathogen recognition and innate immunity // Cell. – 2006. –
Vol. 124. – P. 783-801.
Koenig C.H., Finger H., Hof H. Failure of killed Listeria monocytogenes vaccine to produce protective immunity // Nature. – 1982. – Vol. 297. – P. 233-234.
Detmer A., Glenting J. Live bacterial vaccines – a review and identification of potential hazards // Microbology Cell Fact 5. – 2006. – Vol. 5. – P. 23.
Sander L.E., Michael J., Mark V. Sensing prokaryotic mRNA signifies microbial viabilty and promotes immunity // Nature. – 2012. – Vol. 474. – P. 385-389.
Ahmed S.T., Ivashkiv L.B. Inhibition of IL-6 and IL-10 signaling and stat activation by inflammatory and stress pathways // Immunol. – 2000. – Vol. 165, No 9. – P. 5227-5237.
