ҚОЯНДАРДЫ БУККАЛ ЭПИТЕЛИЙІНЕ ФС-1 ГЕНОТЕКТІЛІГІН БАҒАЛАУ
DOI:
https://doi.org/10.26577/eb.2021.v89.i4.15Кілттік сөздер:
ФС-1, иод, буккальды эпителий, цитогенотоксикалық әсер, кариолиз, кариорексис, микроэлементтер, ядролық шығуларАннотация
ФС-1 препаратының микробқа қарсы белсенділігі йод галогенінің құрамына байланысты, ол өте белсенді. Қазіргі уақытта калий триодидіне негізделген препараттар, мысалы, Луголь ерітіндісі, Иодопирон, Бетадин және басқалары антисептиктер ретінде қолданылады. ФС-1 бактериялық жасуша мембранасының өткізгіштігін жоғарылату қабілеттілігін растайтын зерттеулер жүргізілді, бұл антибиотиктердің тиімдірек әрекет етуіне мүмкіндік береді, ал in vitro және in vivo жүйелерінде зертханалық жануарларда цитотоксичность және генотоксикалықты бағалау үшін зерттеулер жүргізілді. Бұл экспериментте ФС-1-тің алғашқы байланыс торабына, бұлшықет эпителийіне әсері зерттелді. Экспериментте үш қоян қолданылды, 4 мг/кг ФС-1 (бақылау үлгілері) енгізілгенге дейін және ФС-1 (эксперименттік үлгілер) қабылдағаннан кейін алынған бүршік эпителийінің жағындылары. ФС-1-ті күнделікті қолданудың жалпы кезеңі 14 күнді құрады, бұл эпителийдің өздігінен жаңару кезеңі. Алынған жасушалардың жағындылары цитогенетикалық аберрацияның бар-жоғына микроскоппен қаралды. Нәтижесінде ФС-1 қабылдағаннан кейін айтарлықтай өзгеріс болған жоқ, өйткені кариолиз, кариорексия, микроэлектр және ядролық протездері бар жасушалардың деңгейі шамамен бірдей деңгейде қалды. Сондықтан, FS-1 қоян букальды эпителийіне ұзақ уақыт әсер еткенде цитогенотоксикалық әсер етпейді деген қорытындыға келді.
Библиографиялық сілтемелер
Yuldasheva G.A., Zhidomirov G.M., Leszczynski J., Ilin A.I. (2016) Iodine Containing Drugs: Complexes of Molecular Iodine and Tri-iodide with Bioorganic Ligands and Lithium Halogenides in Aqueous Solutions // Practical Aspects of Computational Chemistry, vol.4, pp. 279-301.
Sato S., Miyake M., Hazama A., Omori K. (2014) Povidone-iodine-induced cell death in cultured human epithelial HeLa cells and rat oral mucosal tissue // Drug Chem Toxicol., vol.37, no.3, pp. 268–275.
Jin X., Jiang P., Liu L., Jia Q., Liu P., Meng F., Zhang X., Guan Y., Pang Y., Lu Z., Shen H. (2017) The application of serum iodine in assessing individual iodine status // Clin Endocrinol, vol.87, no.6., pp. 807-814.
Jiang J., Wu M., Shen T. (2009) The toxic effect of different concentrations of povidone iodine on the rabbit's cornea // Cutan Ocul Toxicol., vol.28, no 3, pp. 119-24.
Oliveira L.A. (2008) Effect of topical 0.5% povidone-iodine compared to 5% natamycin in fungal keratitis caused by Fusarium solani in a rabbit model: a pilot study // Arq. Bras. Oftalmol., vol.71, no 6, pp. 860-864.
Catalano L., Cavallo G., Metrangolo P., Resnati G., Terraneo G. (2016) Halogen Bonding in Hypervalent Iodine Compounds // Top Curr Chem., vol. 373, pp. 289-309.
Shi J., Fonda E., Botti S., Marques L., Shinmei T., Irifune T., Flank A.M., Lagarde P., Polian A., Itié J.P., San-Miguel A. (2021) Halogen molecular modifications at high pressure: the case of iodine // Phys. Chem., vol. 23, pp. 3321-3326.
Yuldasheva G., Zhidomirov G., Ilin A. (2018) Effect of α-dextrin nanoparticles on the structure of iodine complexes with polypeptides and alkali metal halogenides, and on the mechanisms of their anti-human immunodeficiency virus and anticancer activity // Design and Development of New Nanocarriers., vol. 17, pp. 637-685.
Yuldasheva G., Zhidomirov G., Leszczynski J., Ilin A. (2013) The effect of the amphoteric properties of amino acids in the zwitterionic form on the structure of iodine complex compounds in aqueous solutions // Journal of Molecular Structure., vol. 1033, pp. 321–330.
Brar A., Unruh D, Aquino A., Krempner C. (2019) Lewis acid base chemistry of Bestmann's ylide, Ph3PCCO, and its bulkier analogue, (cyclohexyl)3PCCO // Chem. Commun., vol. 55, pp. 3513-3516.
Mayer R., Hampel N., Ofial A. (2020) Lewis Acidic Boranes, Lewis Bases, and Equilibrium Constants: A Reliable Scaffold for a Quantitative Lewis Acidity/Basicity Scale // Chem. Eur.J., vol. 27, pp. 4070 –4080.
Yuldasheva G., Zhidomirov G., Ilin A. (2012) Effect of organic ligands with conjugated π-bonds on the structure of iodine-α-dextrin complexes // Biotechnol Appl Biochem., vol.59., no.1, pp. 29-34.
Berdibay S., Paretskaya N., Sabitov A., Islamov R., Tamazyan R., Tokmoldin S., Ilin A., Martirosyan K. (2017) Phenylalanine – iodine complex and its structure // News of the national academy of sciences of the republic of Kazakhstan., vol. 2., no. 312., pp. 5 – 9.
Ilin A., Kerimzhanova B.,Yuldasheva G. (2017) Action Mechanism of Molecular Iodine Complex with Bioorganic Ligands, Magnesium and Lithium Halogenides on Human Tuberculosis Strain With Multiple Drug Resistance // J Microb Biochem Technol., vol. 9, no 6, pp. 293-300.
Ilin A., Kulmanov M., Korotetskiy I., Islamov R., Akhmetova G., Lankina M., Reva O. (2017) Genomic Insight into Mechanisms of Reversion of Antibiotic Resistance in Multidrug Resistant Mycobacterium tuberculosis Induced by a Nanomolecular Iodine-Containing Complex FS-1 // Front Cell Infect Microbiol., vol. 7, pp. 151.
Nersesyan A., Ilin A., Kulmanov M., Muradyan R., Parsadanyan G., Zalinyan G., Chobanyan N. (2011) Investigations of genotoxic activity of the antimicrobial/antiviral agent FS-1 in rodents by means of the micronucleus and the comet assays // Arch Oncol., vol. 19, no. 3-4, pp. 55-8.
Castañeda-Yslas I.J., Arellano-García M.A., García-Zarate M.A., Ruíz-Ruíz B., Zavala-Cerna M.G., Torres-Bugarín O. (2016) Biomonitoring with Micronuclei Test in Buccal Cells of Female Farmers and Children Exposed to Pesticides of Maneadero Agricultural Valley, Baja California, Mexico // Journal of Toxicology, vol. 2016, pp 8-15.
Ilin A., Kulmanov M., Nersesyan A., Stopper H. (2015) Genotoxic activity of the new pharmaceutical FS-1 in Salmonella/microsome test and mouse lymphoma L5178Y cells // J BUON., vol. 20, no 2, pp. 595-601.
Zhang L., Sharma S., Zhu L.X., Kogai T., Hershman J.M., Brent G.A., Dubinett S.M., Huang M. (2003) Nonradioactive Iodide Effectively Induces Apoptosis in Genetically Modified Lung Cancer Cells // Cancer research, vol. 63, pp. 5065–5072.
Shrivastava A., Tiwari M., Sinha R.A., Kumar A., Balapure A.K., Bajpai V.K., Sharma R., Mitra K., Tandon A., Godbole M.M. (2006) Molecular Iodine Induces Caspase-independent Apoptosis in Human Breast Carcinoma Cells Involving the Mitochondria-mediated Pathway // Journal of biological chemistry, vol. 281, no. 28, pp.19762–19771.
Rösner H., Möller W., Groebner S., Torremante P. (2016) Antiproliferative/cytotoxic effects of molecular iodine, povidone-iodine and Lugol's solution in different human carcinoma cell lines // Oncology Letters, vol.12, pp. 2159-2162.
Calissendorff J., Falhammar H. (2017) Lugol’s solution and other iodide preparations: perspectives and research directions in Graves’ disease // Endocrine, vol. 58, no. 3, pp.467–473.
Takada S., Watanabe T., Mizuta R. (2020) DNase γ-dependent DNA fragmentation causes karyolysis in necrotic hepatocyte // J Vet Med Sci., vol. 82, no.1, pp. 23–26.
Rank J. (2002) The method of Allium anaphase-telophase chromosome berration assay // Ekologija, vol 1., pp. 1-12.
Nicholson J.M., Cimini D. (2011) How mitotic errors contribute to karyotypic diversity in cancer // Adv Cancer Res., vol. 112, pp. 43-75.
Levine M.S., Holland A.J. (2018) The impact of mitotic errors on cell proliferation and tumorigenesis // Genes & Dev., vol. 32, pp. 620-638
