Сhlamydomonas reinchardtii-дің мутантты штамдарын алу және оның фенотиптік қасиеттерін зерттеу. Получение мутантных штаммов Сhlamydomonas reinchardtii и исследование его фенотипических характеристик.
Ключевые слова:
УФ-мутагенез, Chlamydomonas reinhardtii CC 1021 Mut1 мутантты штамы, фенотип (түсі ашық жасыл және мөлшері кіші колониялар), мутантный штамм Chlamydomonas reinhardtii CC 1021 Mut1, фенотип (колонии светло зеленого цвета и малого размера),Аннотация
УК мутагенез микробалдырлардың мутантты дақылдарын ала отыра ластанған су экожүйелерін биотестілеу мүмкіншілігін беретін маңызды әдістердің бірі. УК- сәулесімен сәулелендіру химиялық мутагенезбен салыстырғанда маңыздылығы жоғары мутагендеу әдістерінің бірі, яғни УК мутагенез ластануды төмендету, қолдану қарапайымдылығы, өсірудің залалсыз жағдайын қамтамасыз ету секілді бірқатар артықшылықтарға ие. Зерттеме барысында жабайы және Chlamydomonas reinhardtii (CC 1021) жасыл мутантты микробалдыр дақылының фенотиптік сипаттамалары анықталды. Нәтижесінде 1 мин сәулелендіру арқылы мутантты CC1021Mut1 дақылы таңдап алынды. Қатты және сұйық орталардағы мутантты дақыл жабайы дақылға қарағанда колонияларының көлемі, түсі секілді жоғарғы фенотиптік көрініске ие. Микроскоптау мутантты клеткалардың жабайы клеткалардан клетка көлемі мен түсі бойынша анық ерекшеленетінін көрсетті. УФ мутагенез является мощным инструментом для получения мутантных штаммов микроводорослей для использования в биотестировании загрязненных водных экосистем. УФ-облучение является сильным мутагенным веществом, по сравнению с химическим мутагенезом, УФ мутагенез имеет ряд преимуществ, такие как уменьшает загрязнения, простота в использовании, и стерильные условия выращивания. В данном исследовании были изучены фенотипические характеристики диких и мутантных штаммов зеленой микроводоросли Chlamydomonas reinhardtii (CC 1021). В результате были отобраны мутантные колонии штамма CC1021Mut1, полученные после 1 мин облучения. Мутантный штамм имеет отличные фенотипические признаки от дикого штамма, такие как размер и цвет колоний на твердой и жидкой средах. Микроскопирование показало, что мутантные клетки отличаются по размеру и цвету от клеток дикого типа.Библиографические ссылки
1 Charles D.A. Algal Chemical Ecology / ch. 13, Karsten U. - Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2008. – 376 p.
2 Holzinger A., Lütz C., Algae and UV irradiation: effects on ultrastructure and related metabolic functions. Micron
35 - 2006 – P. 190–207.
3 Charles D.A. Algal Chemical Ecology // ch. 13, Karsten U. - Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2008. – 376 p.
4 Karentz D., Cleaver J.E., Mitchell D.L. Cell survival characteristics and molecular responses of Antarctic phytoplankton to ultraviolet-B radiation // J. Phycol. – 1991. – V. 27. – P. 326–341.
5 Hercegová A., Ševčovičová A., Gálová E., UV light-induced DNA damage detection in the unicellular green alga
Chlamydomonas reinhardtii // Biologia. – 2008. – V.63 (6). – P. 958-961.
6 Harris E.H. The Chlamydomonas Sourcebook: Introduction in Chlamydomonas and its Laboratory Use. 2nd. Ed.Elsevier Inc., 2009. – 183 p.
7 Sager R., Palade G.E. Chloroplast structure in green and yellow strains of Chlamydomonas // Exp. Cell Res. – 1954.
– V. 7. – P.584–588.
8 Harris EH The Chlamydomonas Sourcebook: A Comprehensive Guide to Biology and Laboratory Use. – Academic Press, San Diego, CA., 1989. – 294 p.
9 Zhang Y.Q., Lu D.X, Wang Y.J. Effects of ultraviolet radiation on the proein contents of three marine microalgae
species. J. Hui Agricult. Sci. - 2009. – V. 37 – P. 9350-9351.
10 Hagen C, Braune W, Greulich F. Functional aspects of secondary carotenoids in Heamatococcus lacustris (Girod)
Rostafinski (Volvocales) IV, Protection from photodynamic damage // J. Photo chem.. Photobiol. B: Bio. – 1993. – V.
20. – P. 153-160.
11 Andrea L., Leland S. Contrasting Effects of UV-A and UV-B on Photosynthesis and Photoprotection of β-carotene
in two Dunaliella spp. // Plant Cell Physiol. – 2002. – V. 43 (8). –P. 877-884. doi: 10.1093/pcp/pcf105.
12 Solovchenko A, Merzlyak M. Screening of visible and UV radiation as a photoprotective mechanism in plants //
Russian J. of Plant Physiology. – 2008. – V. 55(6). – P. 719-737.
13 Demmig-Adams B., Gilmore A.M., Adams W.W. III In vivo functions of carotenoids in higher plants // FASEB
Journal. – 1996. – V. 10. – P. 403–412.
14 Xiong F.S., Day T.A. Effect of solar ultraviolet-B radiation during springtime ozone depletion on photosynthesis and biomass production of Antarctic vascular plants // Plant Physiology. – 2001. – V. 125. – P. 738–751.
2 Holzinger A., Lütz C., Algae and UV irradiation: effects on ultrastructure and related metabolic functions. Micron
35 - 2006 – P. 190–207.
3 Charles D.A. Algal Chemical Ecology // ch. 13, Karsten U. - Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2008. – 376 p.
4 Karentz D., Cleaver J.E., Mitchell D.L. Cell survival characteristics and molecular responses of Antarctic phytoplankton to ultraviolet-B radiation // J. Phycol. – 1991. – V. 27. – P. 326–341.
5 Hercegová A., Ševčovičová A., Gálová E., UV light-induced DNA damage detection in the unicellular green alga
Chlamydomonas reinhardtii // Biologia. – 2008. – V.63 (6). – P. 958-961.
6 Harris E.H. The Chlamydomonas Sourcebook: Introduction in Chlamydomonas and its Laboratory Use. 2nd. Ed.Elsevier Inc., 2009. – 183 p.
7 Sager R., Palade G.E. Chloroplast structure in green and yellow strains of Chlamydomonas // Exp. Cell Res. – 1954.
– V. 7. – P.584–588.
8 Harris EH The Chlamydomonas Sourcebook: A Comprehensive Guide to Biology and Laboratory Use. – Academic Press, San Diego, CA., 1989. – 294 p.
9 Zhang Y.Q., Lu D.X, Wang Y.J. Effects of ultraviolet radiation on the proein contents of three marine microalgae
species. J. Hui Agricult. Sci. - 2009. – V. 37 – P. 9350-9351.
10 Hagen C, Braune W, Greulich F. Functional aspects of secondary carotenoids in Heamatococcus lacustris (Girod)
Rostafinski (Volvocales) IV, Protection from photodynamic damage // J. Photo chem.. Photobiol. B: Bio. – 1993. – V.
20. – P. 153-160.
11 Andrea L., Leland S. Contrasting Effects of UV-A and UV-B on Photosynthesis and Photoprotection of β-carotene
in two Dunaliella spp. // Plant Cell Physiol. – 2002. – V. 43 (8). –P. 877-884. doi: 10.1093/pcp/pcf105.
12 Solovchenko A, Merzlyak M. Screening of visible and UV radiation as a photoprotective mechanism in plants //
Russian J. of Plant Physiology. – 2008. – V. 55(6). – P. 719-737.
13 Demmig-Adams B., Gilmore A.M., Adams W.W. III In vivo functions of carotenoids in higher plants // FASEB
Journal. – 1996. – V. 10. – P. 403–412.
14 Xiong F.S., Day T.A. Effect of solar ultraviolet-B radiation during springtime ozone depletion on photosynthesis and biomass production of Antarctic vascular plants // Plant Physiology. – 2001. – V. 125. – P. 738–751.
Загрузки
Выпуск
Раздел
БИОТЕХНОЛОГИЯ
