Рост и накопление экономически важных метаболитов некоторыми видами диатомовых микроводорослей в культуре. Культурада кейбір диатомды микробалдырлар түрлерінің өсуі мен экономикалық маңызды метаболиттерді жинақтауы
96 33
Ключевые слова:
диатомеи, рост, пигменты, липиды. диатомея, өсу, пигменттер, липидтер.Аннотация
Определены ростовые кривые диатомовых водорослей Achanthes hauckiana (штамм D6), Navicula gastrum(D1г), Nitzshia fonticola (D1а), выделенных из пресноводных источников Алматинской области, на двух питательных средах (среды SAG и Cohn). Установлено, что по содержанию каротиноидов изученные культуры диатомей не отличаются друг от друга, тогда как содержание фотосинтетических пигментов (хлорофиллы А и С)является видоспецифичным. Максимальным содержанием липидов характеризуется культура Nitzshia fonticola(до 32% от сухой массы), минимальным (до 18% от сухой массы) – культура Achanthes hauckiana. Алматы облысының тұщы су көздерінен бөлініп алынған Achanthes hauckiana (D6 штамы), Navicula gastrum(D1г), Nitzshia fonticola (D1а) диатомды балдырларының екі түрлі қоректік ортадағы (SAG және Cohn қоректік орталары) өсу қисығы анықталды. Каротиноидтар мөлшері бойынша зерттелген диатомея культураларында өзара айырмашылықтары болмайтындығы, ал фотосинтетикалық пигменттер (А және С хлорофилдері) бойынша түр ерекшелігі бар екендігі белгілі болды. Липидтердің ең жоғары мөлшері бойынша Nitzshia fonticola культурасы (құрғақ массасының 32%-ға дейін), ал ең төменгі мөлшері бойынша Achanthes hauckiana культурасы (құрғақ массасының 18%-ға жуығы) сипатталды.Библиографические ссылки
1 Guide méthodologique pour la mise en oeuvre de l’indice biologique diatomées. Paris, 2000. -135 p.
2 Gastineau R. Biodiversité, reproduction et phylogénie des diatomées bleues du genre Haslea et valorisation de leurs pigments
de type Marennine // Thèse de doctorat de l’Université du Maine, Le Mans, France, 2012. – 328 р.
3 Вассер С.П., Кондратьева Н.В., Масюк Н.П. Водоросли. Справочник. – Киев: Наук.думка, 1989. – 608 с.
4 Bentley K., Cox E.J., Bentley P.J. Nature’s batik: a computer evolution model of diatom valve morphogenesis // Journal of
nanoscience and nanotechnology. – 2005. – Vol. 5. – P. 25-34.
5 Norton T.A., Melkonian M., Andersen R.A. Algal biodiversity // Phycologia. – 1996. – Vol. 35. – P. 353-356.
6 Reinfelder J.R, Milligan A.J., Morel F.M.M. The rate of the C4 pathway in carbon accumulation and fixation in a marine
diatom // Plant Physiology. – 2004. – Vol. 135, N. 4. – P. 2106 – 2111.
7 Dugdale R. C., Wilkerson F. Nutrient limitation of new production in the sea. In: P. G. Falkowski and A. D. Woodhead [eds.]
Primary productivity and biogeochemical cycles in the sea. – Plenum Press,1992. – P. 107–122.
8 Sarthou G., Timmermans K. R., Blain S., Treguer P. Growth physiology and fate of diatoms in the ocean: A review // J. Sea
Res. – 2005. -Vol. 53. – P. 25–42.
9 Wetz M. S., Wheeler P.A. Release of dissolved organic matter by coastal diatoms // Limnol. Oceanogr. – 2007. – Vol. 52, N.
2. – P. 798–807.
10 Liu X., Duan S., Aifen L. Effects of organic carbon sources on growth, photosynthesis, and respiration of Phaeodactylum
tricornutum // J. Appl. Phycol. – 2009. – Vol. 21. – P. 239–246.
11 Sanjay K. R., Nagendra P. M. N., Anupama S. Isolation of diatom Navicula cryptocephala and characterization of oil
extracted for biodiesel production // African Journal of Environmental Science and Technology. – 2012. – Vol. 7, N. 1. – P. 41-48.
12 Fajardo A. R., Cerdбn L.E., Medina A.R. Lipid extraction from the microalga Phaeodactylum tricornutum // Eur. J. Lipid Sci.
Technol. – 2007. – Vol. 109. – P. 120–126.
13 Supriya G., Ramachandra T.V. Chronicle of Marine Diatom Culturing Techniques // Indian Journal of Fundamental and
Applied Life Sciences. – 2011. – Vol. 1, N. 3. – P. 282-294.
14 Spolaore P., Joannis-Cassan C., Duran E., Isambert A. Commercial applications of microalgae. Review // Journal of
bioscience and bioengineering. – 2006. – Vol. 101, N. 2. – P. 87-96.
15 Guillard R.R.L., Lorenzen C.J. Yellow green algae with chlorophyllide c // J. Phycol. – 1972. Vol. 11. – P. 10-14.
16 Cohn S.A., Pickett-Heaps J.D. The effects of colchicine and dinitrophenol on the in vivo rates of anaphase A and B in the
diatom Surirella // Eur.J.Cell.Biol. – 1988. – Vol. 35. – P. 523-530.
17 Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in higher plants,
algae and natural phytyplankton // Biochem. Pflanz. – 1975. – Vol. 167. – P. 191-194.
18 Кейтс М. Техника липидологии. – М.: Мир, 1975. – 234 с.
2 Gastineau R. Biodiversité, reproduction et phylogénie des diatomées bleues du genre Haslea et valorisation de leurs pigments
de type Marennine // Thèse de doctorat de l’Université du Maine, Le Mans, France, 2012. – 328 р.
3 Вассер С.П., Кондратьева Н.В., Масюк Н.П. Водоросли. Справочник. – Киев: Наук.думка, 1989. – 608 с.
4 Bentley K., Cox E.J., Bentley P.J. Nature’s batik: a computer evolution model of diatom valve morphogenesis // Journal of
nanoscience and nanotechnology. – 2005. – Vol. 5. – P. 25-34.
5 Norton T.A., Melkonian M., Andersen R.A. Algal biodiversity // Phycologia. – 1996. – Vol. 35. – P. 353-356.
6 Reinfelder J.R, Milligan A.J., Morel F.M.M. The rate of the C4 pathway in carbon accumulation and fixation in a marine
diatom // Plant Physiology. – 2004. – Vol. 135, N. 4. – P. 2106 – 2111.
7 Dugdale R. C., Wilkerson F. Nutrient limitation of new production in the sea. In: P. G. Falkowski and A. D. Woodhead [eds.]
Primary productivity and biogeochemical cycles in the sea. – Plenum Press,1992. – P. 107–122.
8 Sarthou G., Timmermans K. R., Blain S., Treguer P. Growth physiology and fate of diatoms in the ocean: A review // J. Sea
Res. – 2005. -Vol. 53. – P. 25–42.
9 Wetz M. S., Wheeler P.A. Release of dissolved organic matter by coastal diatoms // Limnol. Oceanogr. – 2007. – Vol. 52, N.
2. – P. 798–807.
10 Liu X., Duan S., Aifen L. Effects of organic carbon sources on growth, photosynthesis, and respiration of Phaeodactylum
tricornutum // J. Appl. Phycol. – 2009. – Vol. 21. – P. 239–246.
11 Sanjay K. R., Nagendra P. M. N., Anupama S. Isolation of diatom Navicula cryptocephala and characterization of oil
extracted for biodiesel production // African Journal of Environmental Science and Technology. – 2012. – Vol. 7, N. 1. – P. 41-48.
12 Fajardo A. R., Cerdбn L.E., Medina A.R. Lipid extraction from the microalga Phaeodactylum tricornutum // Eur. J. Lipid Sci.
Technol. – 2007. – Vol. 109. – P. 120–126.
13 Supriya G., Ramachandra T.V. Chronicle of Marine Diatom Culturing Techniques // Indian Journal of Fundamental and
Applied Life Sciences. – 2011. – Vol. 1, N. 3. – P. 282-294.
14 Spolaore P., Joannis-Cassan C., Duran E., Isambert A. Commercial applications of microalgae. Review // Journal of
bioscience and bioengineering. – 2006. – Vol. 101, N. 2. – P. 87-96.
15 Guillard R.R.L., Lorenzen C.J. Yellow green algae with chlorophyllide c // J. Phycol. – 1972. Vol. 11. – P. 10-14.
16 Cohn S.A., Pickett-Heaps J.D. The effects of colchicine and dinitrophenol on the in vivo rates of anaphase A and B in the
diatom Surirella // Eur.J.Cell.Biol. – 1988. – Vol. 35. – P. 523-530.
17 Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in higher plants,
algae and natural phytyplankton // Biochem. Pflanz. – 1975. – Vol. 167. – P. 191-194.
18 Кейтс М. Техника липидологии. – М.: Мир, 1975. – 234 с.
Загрузки
Как цитировать
Dzhokebaeva, S. A., Karpenyuk, T. A., & Orazova, S. B. (2015). Рост и накопление экономически важных метаболитов некоторыми видами диатомовых микроводорослей в культуре. Культурада кейбір диатомды микробалдырлар түрлерінің өсуі мен экономикалық маңызды метаболиттерді жинақтауы. Вестник КазНУ. Серия биологическая, 58(2), 22–27. извлечено от https://bb.kaznu.kz/index.php/biology/article/view/461
Выпуск
Раздел
БИОТЕХНОЛОГИЯ
