КРИОКОНСЕРВАЦИЯ РЕПРОДУКТИВНЫХ КЛЕТОК САМЦОВ РУССКОГО ОСЕТРА

Авторы

  • А.С. Асылбекова Казахский агротехнический университет имени С.Сейфуллина
  • Г.К. Баринова НАО Казахский агротехнический университет имени С.Сейфуллина, Казахстан, Нур-Султан
  • Г.А. Аубакирова 1НАО Казахский агротехнический университет имени С.Сейфуллина, Казахстан, Нур-Султан
  • А.Б. Маханбетова АО «Республиканский центр по племенному делу в животноводстве «Асыл түлік», Казахстан, г.Косшы
  • Ж.Б. Куанчалеев НАО Казахский агротехнический университет имени С.Сейфуллина, Казахстан, Нур-Султан
  • С.Е. Мусин НАО Казахский агротехнический университет имени С.Сейфуллина, Казахстан, Нур-Султан
  • А.Д. Мусина НАО Казахский агротехнический университет имени С.Сейфуллина, Казахстан, Нур-Султан

DOI:

https://doi.org/10.26577/eb.2022.v92.i3.011

Аннотация

В настоящее время одним из перспективных путей сохранения генетического разнообразия рыб не только редких и исчезающих видов, но и объектов аквакультуры, признана криоконсервация спермы. Научные исследования проводились в научно-исследовательском центре "Рыбное хозяйство" НАО "Казахский агротехнический университет им. С. Сейфуллина" и в АО «Республиканский центр по племенному делу в животноводстве «Асыл түлік» в 2022 году. Целью научных исследований являлось изучить методы криоконсервации спермы русского осетра с использованием криопротекторов на основе диметилсульфидоксида с концентрацией 5% и 10% и метанола с концентрацией 3% и 8%. В ходе исследований были использованы общепринятые методики по оценке и заморозке спермы исследуемого объекта. При проведении экспериментальных работ изучен метод замораживания репродуктивных клеток русского осетра с 15 минутной выдержкой в ящике до -210С с последующим погружением в сосуд Дьюара. Также были изучены выживаемость и время жизни сперматозоидов после дефростации. По результатам оценки качества дефростированной спермы русского осетра было установлено, что наиболее эффективным для криоконсервацииявляется криозащитная среда на основе метанола с концентрацией 8%. Количество сперматозоидов с поступательными движениями по трем группам колебалось от 23,8% до 31,2%. При этом время жизни спермиев с использованием данной криозащитной среды составило 118с. Метанол с концентрацией 8% обеспечивает наилучшую устойчивость к оксидативному стрессу, испытываемый клетками во время заморозки. Результаты исследований дают возможность создать криобанк генофонда русского осетра на рыбоводных заводах для сохранения генетического разнообразия.

Библиографические ссылки

Lepilina I.N., Vasilyeva T.V., Abdusamadov A.S. The state of Caspian sturgeon stocks in a long-term aspect (literary review) // South of Russia: ecology, development. 2010. Vol. 5, N3. Pp. 57-65. DOI:10.18470/1992-1098-2010-3-57-65

Vasilyeva L.M., Smirnova N.V., Yusupova A.Z. On the issue of conservation and restoration of sturgeon stocks in the Volga-Caspian basin // South of Russia: ecology, development. 2012. Vol. 7, N1. Pp. 73-76. DOI:10.18470/1992-1098-2012-1-73-76

Matishov G.G., Ponomareva E.N., Belaya M.M. Preservation of the genetic diversity of fish by low-temperature canning methods // Fisheries. 2012. № 3. Pp. 59-62

Matishov G.G., Balykin P.A., Ponomareva E.N. Russia's fishing industry and aquiculture // Herald of the Russian Academy of Sciences. 2012. Vol. 82, N1. Pp. 55-62.

Khodorevskaya R.P., Kalmykov V.A., Zhilkin A.A. The current state of sturgeon stocks in the Caspian basin and measures for their conservation. Bulletin of the AGTU. Series: Fisheries. 2012. № 1. Pp.99-106

Bapsanova, A.M. Cryopreservation of genetic material for the conservation of rare and endangered animal species / A.M. Bapsanova // International Journal of Applied and Fundamental Research. - 2012. – No. 1. – p. 79.

Ananyev, V.I. On the issue of creating a national system of gene pool collections of fish and other aquatic organisms in Russia for aquaculture and the conservation of rare and endangered species: legal and regulatory and methodological aspects / V.I. Ananiev, M.S. Manokhin // Veterinary pathology. - 2007. - No. 1. - S. 19-24.

Belaya M.M., Krasilnikova A.A., Ponomareva E.N. Developments of the Southern Scientific Center of the Russian Academy of Sciences in the field of cryopreservation of fish reproductive cells / Proceedings of the Samara Scientific Center of the Russian Academy of Sciences, vol. 20, No. 5(2), 2018 - P 280-286.

Karamuldaeva A.K., Tikhomirov A.M. The use of glycerin for cryopreservation of white salmon sperm. Bulletin of ASTU. Series: Fisheries. 2017. No. 2. pp.117-121

Ponomareva E.N., Krasilnikova A.A., Tikhomirov A.M., Firsova A.V. New biotechnological methods for cryopreservation of reproductive cells of sturgeon species // Animal Ecology, v.11, No. 1, 2016. - P.59-68

Chipinov, V.G. Economic efficiency of the use of cryopreserved sperm in the cultivation of sturgeon species / V.G. Chipinov, M.M. Bogatyreva // Actual problems of ensuring food security in the south of Russia: innovative technologies for the conservation of bioresources, soil fertility, melioration and water supply: proceedings of the International Scientific Conference (September 27-30, 2011, Rostov-on-Don). - Rostov-on-Don: Publishing House of the YuNTs RAS, 2011. - P. 133-135.

Ponomareva E.N., Bogatyreva M.M., Antonova N.A., Osipova V.P. Optimization of the process of cryopreservation of sturgeon sperm using various media // Proceedings of the Samara Scientific Center of the Russian Academy of Sciences, vol. 11, No. 1 (2), 2009. - P. 132-134

Dokina O.B., Tsvetkova L.I., Pronina L.D., Milenko V.A. Method of cryopreservation of sperm of sturgeons - objects of aquaculture. Sturgeon Aquaculture: Achievements and Development Prospects: Proceedings of the IV International Scientific and Practical Conference, March 13-15, 2006 Astrakhan. - M.: VNIRO Publishing House, 2006, S.76-79

Huang B. X.-R. et al. Effect of cryopreservation on the enzyme activity of Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii Brandt &Ratzeburg, 1833) semen //J. Appl. Ichthyol. – 2014. – V. 30. - P. 1585-1589.

Dzyuba B. et al. Spermatozoa motility, cryoresistance, and fertilizing ability in sterletAcipenserruthenus during sequential stripping // Aquaculture, 2012. – V. 356-357. – P. 272-278.

Dzyuba B. et al. Motility and fertilization ability of sterlet Acipenser ruthenus testicular sperm after cryopreservation // Cryobiology. – 2014. – V. 69. - P. 339-341.

Horvath A., Chevre P., Urbanyi B. Sperm cryopreservation in sturgeon with a special focus on A. sturio: chap. 35 // In: Biology and conservation of the European sturgeon Acipenser sturio L. 1758: the reunion of the European and Atlantic sturgeons. Ed. by Williot P., Rochard E., DesseBerset N., Kirschbaum F., Gessner J. /Heidelberg, NLD: Springer, 2011. – P. 465-476.

Aramli M. S., Nazari R. M., Gharibi M. R. Effect of post-thaw storage time on motility and fertility of cryopreserved beluga sturgeon (Huso huso) sperm // Reprod. Domest. Anim. – 2015a. -v. 50.-P. 349-352.

Sadeghi A. et al. Cryopreservation of stellate (Acipenser stellatus) sperm: Effect of diff erent concentrations of DMSO and dilution dates on sperm mobility and motility duration after longterm storage // Global Veterinaria. — 2013. – V. 10. – P. 26-30.

Boryshpolets S. et al. Cryopreservation of sterlet (Acipenser ruthenus) spermatozoa using diff erentcryoprotectants // Journal of Applied Ichthyology. — 2011. — V. 27. — P. 1147–1149.

Judycka S. et al. New extender for cryopreservation of Siberian sturgeon (Acipenser baerii) semen //Cryobiology. – 2015. – Feb25. pii: S0011-2240 (15) 00 033–4.

Manual on sturgeon reproduction / Coppen International bv, Helmont, The Netherlands, 2007. – Special Issue. – 40 p.

Lakin G.F. Biometrics - M.: Higher School, 1990.-352 p.

Korosov A. V., Gorbach V. AT. Computer processing of biological data. -Petrozavodsk: PetrGU Publishing House, - 2007, -76 p.

Aramli M. S. et al. Effectiveness of glucose-methanol extender for cryopreservation of Husohuso spermatozoa // Anim. Reprod. Sci. – 2015. – V. 162. – P. 37-42.

Shaliutina-Kolešová A. et al. The infl uence of cryoprotectants on sturgeon (Acipenser ruthenus) sperm quality, DNA integrity, antioxidant responses, and resistance to oxidative stress // Anim. Reprod. Sci. – 2015. – V. 159. – P. 66-76.

Загрузки

Опубликован

2022-09-30